MMP7在食管癌及癌旁组织中的表达差异的研究
发表时间:2010-10-13 浏览次数:383次
作者:孙晓宏, 庞作良, 罗洞波 作者单位:(新疆医科大学附属肿瘤医院胸外科, 新疆乌鲁木齐830011)
【摘要】 目的探讨基质金属蛋白酶7(MMP7)在食管癌癌组织及其癌旁组织中的表达。方法采用RTPCR方法检测MMP7在60例食管癌组织及其相应癌旁组织中的表达。结果MMP7在癌组织中阳性率为90.0%(54/60),其对应癌旁组织中阳性率为48.3%(29/60)。经RTPCR半定量分析,食管癌组织与其癌旁组织中MMP7的表达量差异有统计学意义(P<0.05)。MMP7的表达与肿瘤侵润深度及淋巴结转移有关(P<0.05)。结论MMP7的表达可能与食管癌的早期进展和程度有关。
【关键词】 食管鳞癌; 基质金属蛋白酶7; 逆转录聚合酶链式反应
Study on the different expression of MMP7 in cancerous tissue and its
paracancerous tissue among esophageal cancer patientsSUN Xiaohong,PANG Zuoliang,LUO Dongbo
(Department of Surgical Thorax, Affiliated Tumor Hospital, Xinjiang Medical University,
Urumqi 830011, China)Abstract: ObjectiveTo study the expression of Matrix metalloproteinase7 (MMP7) in cancerous tissues and its paracancerous tissues among esophageal cancer patients. MethodsUsing RTPCR to detect the expression of MMP7 in 60 cases of esophageal cancer tissues and its paracancerous tissues. ResultsThe positive rate of MMP7 expression were 90.0%(54/60) in esophageal cancer tissues, 48.3%(29/60) in paracancerous tissues. Analyzed by semiquantitative RTPCR, there was significant difference in the expressions of MMP7 between cancerous tissues and its paracancerous tissues (P<0.05). There was a relationship between expression of MMP7 with tumor invasion and lymph node metastasis (P<0.05). ConclusionsMMP7 may function in early stage esophageal squamous cell carcinoma.
Key words: esophageal squamous cell carcinoma; Matrix metalloproteinase7; RTPCR食管癌是世界上最具有侵袭性的恶性肿瘤之一,且因该病发现较晚、临床进展迅速和低生存率引起人们关注[1-2]。食管癌进展是一个极其复杂的多步骤的过程,包括肿瘤细胞脱离、局部侵润、血管增生和肿瘤细胞生长及转移到其他组织中[3]。而细胞外基质降解和新生血管形成是肿瘤生长、侵润和转移的必要条件[4]。因此,参与此过程的一些细胞因子引起学者们广泛的研究。本研究应用逆转录多聚酶链反应( RTPCR) 技术检测基质金属蛋白酶7 (MMP7)基因在食管癌组织及相应的癌旁组织中的表达情况,并探讨其在食管癌发生、发展及转移中的作用。
1材料与方法
1.1材料本组60例食管癌组织及相应癌旁组织标本取自新疆医科大学附属肿瘤医院2007年12月~2009年7月行根治性手术切除的食管癌标本,均为鳞癌。男性43例, 女性17例,年龄36 ~75 岁, 平均 60岁。临床分期:Ⅰ期2例,Ⅱ期22例,Ⅲ期36例。淋巴结转移36例,无淋巴结转移24例。高分化3例,中分化42例,低分化15例。
1.2试剂和仪器RNA提取试剂Trizol购自Invitrogen公司;逆转录试剂盒购自Promega公司,PCR即用试剂盒购自上海生物工程有限公司,琼脂糖、溴化乙锭(EB)、氯仿、异戊醇、无水乙醇、异丙醇由新疆医科大学基础医学院科研中心提供,PCR扩增仪icycler型(BioRad;美国),DC2000凝胶成像分析仪(BioRad;美国)。
1.3方法
1.3.1总RNA的提取按Trizol 法总RNA提取试剂盒说明进行。取1 μg所提取的组织RNA,在紫外分光光度计下测定OD260、OD280及其比值,以确定所提取RNA的浓度和纯度在1.8~2.1,同时取5 μl RNA在1.2%的琼脂糖凝胶电泳,观察所提取RNA的18 S、28 S条带,以确定提取的RNA的质量。
1.3.2cDNA合成及PCR反应取稀释的总RNA标本1 μl加oligo(dt)引物l μl,双蒸水9 μl,混匀后置于72℃10 min,取出后置于冰上逐次加入MgCl2 4 μl,dNTP2 μl,10倍反应缓冲液2 μl,RNA酶抑制剂0.5 μl,逆转录酶0.5 μl (5 U),混匀后置于42℃1 h,用95℃5 min终止反应,取出后置于冰上,加80 μl双蒸水,得到100 μl逆转录产物。PCR扩增体系反应体系为20 μl,其中含逆转录标本1 μl,各基因上下引物各1 μl,即用PCR反应试剂盒反应溶液(2倍浓度)10 μl,双蒸水7 μl。引物序列及PCR产物大小及PCR扩增条件见表1。表1引物序列、PCR产物大小及PCR扩增条件基因引物序列(5′→3′)大小(bp)RTPCR 程序GADPHF: GCGGGCTCTCCAGAACATCAT
R: CCAGCCCCAGCGTCAAAGGTG29895℃5 min后,95℃30 s→59℃30 s→72℃60 s,扩增35个循环;72℃7 min。MMP7F: ATGTTAAACTCCGCGTCATA
R: CAGCATACAGGAAGTTAATCC
R: GGCTGGTCAGTGGCTTGGGGTA41895℃5 min后,95℃30 s→53℃30 s→72℃30 s,扩增35个循环;72℃7 min。
1.3.3产物鉴定取5 μl PCR反应产物加入1 μl上样缓冲液,经2%的琼脂糖凝胶电泳后,在DC2000凝胶成像分析仪下分析并保存结果。
1.4统计学处理应用SPSS 11. 5软件对数据进行统计分析,采用t检验及χ2检验,检验水准α=0.05。
2结果
2.1MMP7在癌组织及癌旁组织中的表达通过RTPCR分析,所有60例食管癌患者的癌组织中MMP7的表达阳性率为90.0%(54/60),其相应的癌旁组织中MMP7表达阳性率为48.3%(29/60)。MMP7在癌组织及其相应的癌旁组织的表达差异有统计学意义(P<0.05)。
2.2MMP7的表达与食管鳞状细胞癌临床病理因素的关系MMP7的表达与肿瘤侵润深度及淋巴结转移有关(P<0.05),其他均与临床因素无相关性(表2)。
表2食管癌组织中MMP7的表达与临床病理特征的关系 病例资料例数MMP7表达水平性 别男性430.678 2±0.128 2女性170.817 0±0.185 7分化程度低分化150.610 1±0.173 6高、中分化450.990 0±0.178 8肿瘤侵润深度T1、T2100.260 0±0.182 8*T3、T4501.023 9±0.162 6淋巴结转移无240.640 3±0.137 2*有361.065 0±0.215 1注: *P<0.053讨论MMPs是一类具有降解细胞外基质和基底膜能力的蛋白水解酶,目前在人类MMP基因家族中已超过20个成员,而且根据结构和底物特异性分为胶原酶、间质溶解素和明胶酶[5]。近年研究显示在肿瘤细胞逃逸转移中起重要作用[6]。本研究显示在食管癌组织中MMP7的表达明显高于其癌旁组织,并且MMP7的表达与肿瘤浸润深度及淋巴结转移有关。因MMP7在MMPs家族中有着极为特殊的结构,且MMP7只表达于肿瘤细胞;其高表达还能激活家族中其他成员,对ECM有广谱降解作用[7],故MMP7在肿瘤发生、发展中起着更为重要的作用。MMPs主要是通过对基底膜的水解作用促进转移。王瑞婷等[8]研究认为MMP7能降解细胞膜上的Fas配体,抑制Fas介导的细胞凋亡,从而间接促进肿瘤VEGF的分泌。总之,食管癌的发生、发展是个多基因、多步骤的反应过程, MMP7在其中起了非常重要的作用,与肿瘤早期进展和程度可能具有一定的关系,并可能与食管癌的发生、发展有关,其表达的上调可能是食管癌发病的机制之一,对MMP7的检测可评价肿瘤的恶性程度及预后,并为进一步阐明食管癌的发生、发展及转移提供了实验依据。
【参考文献】
[1]ElShahat M, Lotfy M, Fahmy L, et al. Prognostic value of microvessel density, matrix metalloproteinase9 and p53 protein expression in esophageal cancer[J]. Egypt Natl Cancer Inst,2004,16:224230.
[2]Vallbohmer D, Lenz HJ. Predictive and prognostic molecular markers in outcome of esophageal cancer[J]. Dis Esophagus,2006,19:425432.
[3]Lagarde SM, Kate FJW, Richel DJ, et al. Molecular Prognostic Factors in Adenocarcinoma of the Esophagus and Gastroesophageal Junction[J]. Ann Surg Oncol,2007,14:977991.
[4]Gu ZD, Li JY, Li M, et al. Matrix metalloproteinases expression correlates with survival in patients with esophageal squamous cell carcinoma[J]. Am J Gastroenterol,2005,100:18351843.
[5]Gu ZD, Chen KN, Li M, et al. Clinical significance of matrix metalloproteinase9 expression in esophageal squamous cell carcinoma[J]. World J Gastroenterol,2005,11(6):871874.
[6]Ahokas K, KarjalainenLindsberg ML, Sihvo E, et al. Matrix metalloproteinases 21 and 26 are differentially expressed in esophageal squamous cell cancer[J]. Tumor Biol,2006,27:133141.
[7]Zhang JH, Jin X, Fang SM, et al. The functional polymorphism in the matrix metalloproteinase7 promoter increases susceptibility to esophageal squamous cell carcinoma, gastric cardiac adenocarcinoma and nonsmall cell lung carcinoma[J]. Carcinogenesis,2005,26 (10):17481753.
[8]王瑞婷, 申兴斌, 梅爱敏, 等. 基质金属蛋白酶7和血管内皮生长因子与大肠癌进展及预后的关系[J].广东医学,2006,9(27):13191322.