chk2反义寡核苷酸对顺铂诱导卵巢癌SKOV3细胞凋亡的影响
发表时间:2009-06-24 浏览次数:573次
作者:朱克修,李玢,王佳,韩晓兵
【摘要】 目的:观察卵巢癌SKOV3细胞转染chk2反义寡核苷酸后在顺铂作用下细胞凋亡的变化. 方法:用MTT法检测不同浓度顺铂对SKOV3细胞的抑制率,Western Blot法检测SKOV3细胞中Chk2蛋白的表达. 流式细胞仪及TUNEL法检测转染chk2反义寡核苷酸后顺铂作用下SKOV3细胞凋亡情况. 结果:顺铂对SKOV3细胞的生长抑制率随浓度增高和时间延长而升高. Western Blot法检测证实转染chk2反义寡核苷酸后SKOV3细胞中Chk2蛋白表达受到明显抑制. 流式细胞仪检测抑制chk2基因表达后SKOV3细胞凋亡率为(77.6±1.7)%,明显高于正常组(24.7±1.76)%,空脂质体组(35.6±1.4)%及转染正义寡核苷酸细胞组(47.6±1.2)%. TUNEL法检测结果与流式细胞法一致. 结论:chk2可作为卵巢癌增敏治疗的有效靶点.
【关键词】 chk2基因;反义核酸技术;卵巢肿瘤;顺铂
0引言
肿瘤细胞的多耐药性已成为恶性肿瘤化疗失败的重要原因[1],进行化疗增敏或寻找新的治疗手段具有重要意义. 细胞周期检测点是增强肿瘤治疗敏感性研究的热点之一[2]. 肿瘤的耐药与肿瘤细胞逃避放化疗诱导的肿瘤细胞凋亡有关,因为放化疗作用下可使细胞周期检测点激活,导致细胞周期停滞和细胞的损伤修复,从而使肿瘤细胞避免凋亡. 周期检测点激酶1,2 (check point kinase 1,2,Chk1,Chk2)是细胞周期检测点中最关键的效应蛋白酶[3]. 国外一些研究表明,转染chk1/chk2反义寡核苷酸可明显提高一些肿瘤模型对抗肿瘤药物的敏感性,说明chk1/chk2可能是一些肿瘤增敏治疗的有效靶点[4]. 本研究通过检测chk2反义寡核苷酸对顺铂诱导的SKOV3细胞凋亡的影响,以探讨chk2能否作为卵巢癌增敏治疗的有效靶点.
1材料和方法
1.1材料SKOV3细胞株由西安交通大学临床医学研究分子中心提供. RPMI 1640购自Gibco公司,胎牛血清购自杭州四季青生物工程材料有限公司,噻唑蓝(MTT)购自Amressco公司,转染试剂Lipofectamine 2000购自Invitrogen公司,鼠抗人Chk2 mAb购自NEOMARKERS公司,辣根酶标记羊抗鼠二抗购自博士德公司,原位细胞凋亡检测试剂盒购自华美生物工程公司.
1.2方法
1.2.1细胞培养人卵巢癌细胞SKOV3常规培养在含100 mL/L胎牛血清的RPMI1640培养基中,培养条件为37℃,50 mL/L CO2饱和湿度,待细胞长满瓶底时,2.5 g/L胰蛋白酶消化传代.
1.2.2MTT法测定不同浓度顺铂在不同时间对SKOV3细胞生长的抑制率取对数生长期的SKOV3细胞,调整细胞密度为5×107/L,接种于96孔板, 200 μL/孔,37℃,50 mL/L CO2培养箱中培养24 h后加药,使顺铂终浓度为10,20,40,80,160 μmol/L,每个浓度设四个平行孔,并同时设不加药物的阴性对照和无细胞的空白对照,分别于作用24,48,72 h后加入20 mmol的MTT溶液,20 μL/孔,继续培养4 h后,吸去上清,加入DMSO,150 μL/孔,振荡器震荡10 min,使结晶溶解完全,用酶标仪(650 BIORAD公司)在490 nm处测量A值,计算细胞增殖抑制率(inhibition rate, IR%). 绘制顺铂对SKOV3细胞的生长抑制曲线.
1.2.3脂质体介导寡核苷酸转染SKOV3细胞株
1.2.3.1寡核苷酸链的设计和合成根据文献[5]合成chk2的反义寡核苷酸链(antisense oligodeoxynucleotide,Adosn: 5′TCCACAGGCACCACTTCC3′),并同时合成其正义的寡核苷酸链(oligodeoxynucleotide, odn: 5′GGAAGTGGTGCCTGTGGA3′)作为对照. 均采用全硫代修饰,其中部分寡核苷酸链的5′端以FITC标记.
1.2.3.2实验分组与转染细胞分4组,A:正常组:未经任何处理;B:转染空脂质体组(LP);C:转染chk2正义链组(chk2 odn组);D:转染chk2反义链组(chk2 Asodn 组). B至D两组在转染终止10 h后同样用40 μmol/L顺铂处理细胞24 h.
1.2.3.3转染效率的测定于转染前一日用无抗生素的含10 mL/L胎牛血清的RPMI1640调整细胞密度为2.5×108/L,接种于24孔板,500 μL/孔. 转染当天细胞密度达到90%~95%,并换为500 μL无抗生素无血清RPMI1640培养. 分别取不同量的荧光标记的寡核苷酸链(0.6,0.8,1.0 μg)加到50 μL的RPMI1640中,混匀. 再取2 μL的Lipofectamine2000,加到50 μL的RPMI1640中,混匀. 室温放置5 min后,将分别混有寡核苷酸链和Lipofectamine2000的RPMI1640混合,室温放置20 min(寡核苷酸链与脂质体比值分别为0.6 μg∶2 μL,0.8 μg∶2 μL和1.0 μg∶2 μL). 将上述混合物加入24孔板中,轻轻混匀,放37℃,50 mL/L CO2培养箱中,培养6 h后将培养基换为500 μL含100 mL/L胎牛血清的RPMI1640,继续培养至24 h,荧光倒置显微镜下观察转染效率.
1.2.4Western Blot法检测Chk2蛋白的表达用酶抑制剂法提取细胞总蛋白,并用Bradford比色法作蛋白定量,煮沸5 min使蛋白变性,120 g/L聚丙烯酰胺凝胶电泳分离蛋白质,转膜,加入1∶400稀释的鼠抗人Chk2 mAb,室温孵育1.5 h,TBST洗膜3 min,6次. 加入1∶3000稀释的辣根酶标记的羊抗鼠二抗室温孵育1 h,TBST洗膜3 min,6次. ECL(购自Amersham bioscience)显色,X光胶片暴光,洗片,扫描存档.
1.2.5流式细胞仪检测细胞凋亡收集细胞,调整细胞密度为1×109/L,取1 mL细胞悬液,离心, PBS洗涤3次,加10 μL AnnexinVFITC,轻轻混匀,加入5 μL PI避光室温反应15 min,上流式细胞仪(EPLCS ELITE COULTER CORPORATION公司)检测.
1.2.6TUNEL法检测细胞凋亡将SKOV3单细胞悬液接种于24孔培养板培养,使细胞爬于盖玻片,按前述分组处理细胞后捞出盖玻片,多聚甲醛固定,按TUNEL试剂盒说明进行操作.
统计学处理:实验结果均采用SPSS13.0软件进行方差分析及两两比较. P<0.05为差异有统计学意义.
2结果
2.1顺铂对SKOV3细胞的生长抑制作用对照组SKOV3细胞体外生长良好,10,20,40,80,160 μmol/L顺铂对SKOV3细胞均有明显的抑制效应(P<0.05), 10 μmol/L顺铂作用SKOV3细胞24,48,72 h后的抑制率分别为29.1%,18.2%,50.4%,160 μmol/L顺铂作用SKOV3细胞24,48,72 h后的抑制率分别为78.9%,78.5%,88.4%. 随着时间延长和浓度增加,其抑制作用越来越明显(图1). DDP作用24 h的IC50值为37.2 μmol/L.
图1顺铂对卵巢癌SKOV3细胞株生长抑制曲线
2.2chk2反义寡核苷酸转染SKOV3细胞的效率用FITC标记的寡核苷酸转染SKOV3细胞,24 h后用荧光倒置显微镜观察转染效率,发现DNA/Lipofectamine2000脂质体比率为0.6 μg∶2 μL,0.8 μg∶2 μL和1.0 μg∶2 μL时的转染效率分别为98.2%,98.9%和99.3%,其中DNA/Lipofectamine2000脂质体比率为1.0 μg∶2 μL时转染效率最高(图2).
A: DNA/Lipofectamine 2000脂质体比率为0.6 μg∶2μL;B: DNA/Lipofectamine 2000脂质体比率为0.8 μg∶2 μL;C: DNA/Lipofectamine 2000脂质体比率为1.0 μg∶2 μL;A1,B1,C1:光镜检测;A2,B2,C2:荧光倒置显微镜检测.
图2不同比率的DNA/Lipofectamine2000脂质体转染效率×20
2.3转染chk2反义寡核苷酸对Chk2蛋白表达的影响Western Blot检测结果显示其灰度值分别为1.26,0.76,0.29,0.06,可见转染chk2反义寡核苷酸可明显抑制Chk2蛋白的表达(图3). 与空白对照组,空脂质体组和转染chk2正义链组比较差异有统计学意义(P<0.01).
A:正常组;B:转染空脂质体组(LP);C:转染chk2正义链组(chk2 odn组);D:转染chk2反义链组(chk2 Asodn 组).
图3chk2反义寡核苷酸对SKOV3细胞Chk2蛋白表达的影响
2.4转染chk2反义寡核苷酸对SKOV3细胞早期凋亡的影响40 μmol/L顺铂处理各组细胞24 h后,流式细胞仪检测转染chk2反义链组细胞凋亡率为(77.6±1.7)%,明显高于正常组(24.7±1.76)%,空脂质体组(35.6±1.4)%及转染正义寡核苷酸细胞组(47.6±1.2)% (P<0.05). 说明转染chk2反义寡核苷酸可诱导SKOV3细胞的凋亡增加. TUNEL染色后,转染chk2反义寡核苷酸链后SKOV3细胞在顺铂作用下凋亡细胞数明显高于正常组,空脂质体组和转染chk2正义寡核苷酸链组凋亡细胞数(图4). 检测结果与Annexin V/PI流式细胞仪检测法获得结果一致.
A:正常组;B:转染空脂质体组(LP);C:转染chk2正义链组(chk2 odn组);D:转染chk2反义链组(chk2 Asodn 组).
图4TUNEL法检测顺铂处理24 h后各组细胞的凋亡×40
3讨论
由于对卵巢癌仍缺乏有效的早期诊断方法,多数患者确诊时已属晚期,卵巢癌亦成为死亡率最高的妇科恶性肿瘤. 手术治疗后辅以化学治疗是目前卵巢癌的标准治疗方案,然而,肿瘤对化疗药物的耐药常导致治疗失败. 有报道约15%的卵巢癌患者对化疗原发性耐药,至少80%的卵巢癌患者最终形成多种药物联合化疗的耐药. 研究发现,肿瘤细胞的多耐药性以成为恶性肿瘤化疗失败的重要原因之一[1],因而进行化疗增敏或寻找新的治疗手段具有重要意义.
chk1/chk2在细胞周期检测点中起重要作用. 国外一些研究表明通过阻断chk1/chk2可以明显增加肿瘤细胞的凋亡[6-8]. 大量研究表明,chk1,2主要在G2/M期检测点发挥作用[9]. DNA受损后,活化的chkl/2磷酸化CDC25 上的Sevr216,使其形成与1433蛋白质结合的位点,从而阻止CDC25 的去磷酸化作用. 如此cdc2因未脱磷酸化不具活性最终影响cdc2与CyclinB构成的活性复合体从而引起G2M期阻滞[10-11]. 卵巢癌细胞对化疗药物的耐药是治疗失败的重要原因. 为了证明chk2是否是卵巢癌增敏治疗的有效靶点,通过反义寡核苷酸杂交技术,合成chk2反义寡核苷酸链,经过杂交,用Western Blot法检测Chk2蛋白在肿瘤细胞中的表达情况. 并用顺铂处理杂交后细胞,通过流式细胞术检测,比较其与其他对照组肿瘤细胞凋亡率的改变情况. 我们的实验结果表明,通过阻断chk2,可明显增加卵巢癌细胞对顺铂的敏感性.
本研究首先用MTT法检测不同浓度的顺铂在不同时间点对卵巢癌SKOV3细胞的抑制率的变化. 通过本试验,我们了解到顺铂对SKOV3细胞的抑制率随时间和浓度的增加上升. 并计算出DDP作用24 h的IC50值为37.2 μmol/L. 所以我们在后面的实验中均选择用40 μmol/L顺铂处理SKOV3细胞24小时. 并通过检测chk2反义寡核苷酸转染细胞的效率,获得一个最佳的寡核苷酸和脂质体的比例,使实验结果更加稳定可靠. 以上结果表明DNA/Lipofectamine 2000脂质体比率为0.6 μg/2 μL, 0.8 μg/2 μL和1.0 μg/2 μL时的转染效率均接近100%. 我们选择寡核苷酸/Lipofectamine 2000脂质体比率为0.8 μg/2 μL来转染SKOV3细胞. 转染后,用Western Blot法检测各组SKOV3细胞的Chk2蛋白表达情况,发现转染chk2反义寡核苷酸链组chk2蛋白的表达明显降低. 用40 μmol/L顺铂处理SKOV3细胞24 h后,用流式细胞仪及TUNEL法检测显示转染chk2反义寡核苷酸链组SKOV3细胞的凋亡率明显增加(P<0.05). 证明了阻断chk2来增加宫颈癌对顺铂敏感性的有效性.
综上所述,采用反义寡核苷酸可以有效地抑制Chk2蛋白的表达,并增加顺铂诱导的SKOV3细胞的凋亡. 因此,本试验结果可以证明chk2可以作为卵巢癌增敏治疗的有效靶点.
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