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《心血管病学》

骨桥蛋白及其在动脉粥样硬化中的作用

发表时间:2010-03-30  浏览次数:466次

  作者:崇爱国,刘伏元    作者单位:安徽医科大学附属省立医院心内科,安徽 合肥 230001  【关键词】  骨桥蛋白;动脉粥样硬化;诊断

  骨桥蛋白(osteopontin,OPN)是细胞外基质中一种重要的糖蛋白,骨组织中大量存在,其他组织中也有少量的表达,但正常血管壁中几乎不表达。1986年以前曾被称为早期T淋巴细胞活性1(early  T lymphocyte  activation,Eta-1)、分泌性磷蛋白1(secrected phosphoprotein 1,SSP-1)、骨唾液酸蛋白1(bone sialoprotein 1,BSP-1),自从被命名为OPN以来,已相继克隆了大鼠、小鼠、猪、牛、鸡和兔的OPN cDNA。近来研究发现在血管壁动脉粥样硬化处的内皮细胞和平滑肌细胞内OPN mRNA呈高表达状态。它在动脉粥样硬化中的作用己经引起人们的关注。本文就OPN及其在动脉粥样硬化中的作用作一综述。

  1  骨桥蛋白的结构特征

  由于来源的生物种系不同,OPN由264-314个氨基酸残基组成,其中天冬氨酸、谷氨酸、以及丝氨酸残基所占的比例较高。OPN中含有单糖链,既有N-糖基化位点,又有O-糖基化位点。OPN具有以下结构特征:(1)精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸(RGD)序列:RGD序列可与细胞表面整合素受体 avβ、avβ 3、avβ 5等结合,介导糖蛋白与细胞间的粘附过程。有研究表明:过度表达OPN的乳腺癌细胞经淋巴管侵润明显增强,失去RGD序列后可部分消除此现象[1],RGD序列具有高度保守性,一旦变异或缺失将丧失其促粘附的功能;(2)凝血酶裂解位点:OPN能够被凝血酶水解成两个大小不同的肽链,此酶作用位点在RGD序列竣基端第6位氨基酸残基所形成的肽键。研究证明,与完整的OPN分子相比,被凝血酶裂解后含有RGD序列的N末端片断促进粘附的功能反而加强,而缺乏RGD序列的氨基片断其粘附能力减弱;(3)基质金属蛋白酶(MMP)作用位点:目前发现在OPN分子中存在3个MMP上的酶切位点和2个MMP-7的酶切位点[2]。与凝血酶的功能相似,OPN经MMP-3或MMP-7酶切以后其诱导巨噬细胞迁移的功能明显增强;(4)非RGD细胞粘附位点:在骨桥蛋白的羧基末端序列中,还有一段非RGD的细胞粘附位点,OPN以非RGD依赖方式与细胞表面CD44结合而发挥细胞信号分子的作用,其主要与细胞免疫有关[3];(5)钙离子结合位点:酪氨酸蛋白激酶Ⅱ、蛋白激酶C等能催化骨桥蛋白分子中丝氨酸和苏氨酸残基发生磷酸化,磷酸化的OPN可与多个Ca2+结合在一起。

  2  骨桥蛋白的组织分布

  正常情况下,OPN主要存在于骨组织中,但是在病理过程中,许多种细胞可以产生OPN,如:内皮细胞、巨噬细胞、平滑肌细胞(SMC)成纤维细胞、活化的T淋巴细胞和自然杀伤细胞(NK)等。在正常的动脉壁OPN表达甚微或几乎不表达,但是Cherida等人用免疫组织化学染色(immunohistochemical staining)发现在动脉粥样斑块处的泡沫细胞中或者钙化的部位OPN表达明显增加[4],人主动脉粥样硬化斑块中的巨噬细胞、平滑肌细胞、内皮细胞都可以表达OPN mRNA及合成OPN。内皮细胞、平滑肌细胞、成纤维细胞与OPN的作用依赖于RGD和Ca2+,抗 avβ 3抗体可部分阻滞这些细胞向OPN迁移。近来研究表明,OPN作为一个细胞因子调节细胞功能而参与组织修复和炎症过程[5],研究发现在疾病和组织损伤引起的炎症部位OPN的水平增高。

  3  骨桥蛋白表达的诱导因素

  研究发现,正常情况下其表达甚微的细胞,如:巨噬细胞、SMC、T淋巴细胞、成纤维细胞等在一些诱导因素下可以大量表达OPN,包括:(1)高血压:Iizuka等[6]把人主动脉平滑肌细胞暴露在160 mmHg的高压下3h,然后再培养,结果3h后发现高压组同非高压组相比细胞增殖11%。免疫印迹分析发现,培养8 h以内OPN的表达没有明显的改变,24h后OPN表达比对照组增加大约50%;(2)高血糖:糖尿病人群中动脉粥样硬化的患病率较高,在糖尿病状态下,大鼠近端小管细胞中OPN表达上调[7],另外,无论是人类还是大鼠,其动脉中膜平滑肌细胞的OPN表达均明显亢进。Takenoto等[8]对培养的大鼠主动脉平滑肌的研究表明,OPN在高浓度葡萄糖(25mmol/L)状态下,通过蛋白激酶C(PKC)活化,在转录水平上表达明显增加。高浓度葡萄糖处理的平滑肌细胞表达OPN增加可被PKC抑制剂GF109203X抑制;(3)低氧:对大鼠主动脉平滑肌细胞进行研究发现,在缺氧(3%O2) 2 h后OPN  mRNA及OPN 蛋白的表达增加,6、12 h后下降,24 h后又增加。PKC和P38丝裂原活化蛋白激酶抑制剂可以明显减弱缺氧诱导的OPN表达,高浓度葡萄糖可以加强缺氧诱导的OPN表达[9];(4)干扰素:IFN-γ(1 000 U/ml)明显刺激平滑肌细胞内骨桥蛋白的表达,Western|blotting分析24 h干预组OPN量较对照组提高71.18%,48 h后较对照组提高75.66%,说明IFN-γ能在基因水平上刺激大鼠平滑肌细胞内OPN的表达[10];(5)成纤维细胞生长因子:Li等[11]研究发现,成纤维细胞生长因子-1(FGF-1)可以与其受体结合刺激大鼠主动脉平滑肌细胞表达OPN mRNA及OPN蛋白,高度选择性的FGF-1受体酪氨酸激酶(Src)抑制剂PD166866可以减弱FGF-l诱导的OPN mRNA表达,另外PP2(Src特异性抑制剂)和丝裂原细胞外信号反应激酶(MEK)抑制剂PD98059都可以减弱FGF-l诱导的OPN 表达。说明FGF-1与FGFR-1结合在转录水平上通过Src/MEK/MAP信号路径上调OPN的表达,通过OPN的表达可以介导成纤维细胞的迁移;(6)其他因素:内皮素-1、胰岛素样生长因子(IGF)、血小板源生长因子(PDGF)内皮细胞生长因子样因子(EGF样因子)、转化生长因子β(TGF-β)、AngⅡ和UTP等均能刺激血管内皮细胞和平滑肌细胞表达骨桥蛋白分子[12]。

  4  骨桥蛋白在动脉粥样硬化(AS)中的作用

  有一种学说认为AS各种主要危险因素最终都损伤动脉内膜,内膜受损的同时还释放出多种细胞因子,而粥样斑块的形成是动脉对内膜损伤作出反应的结果。在这种损伤反应中,平滑肌细胞、成纤维细胞和巨噬细胞起到了非常重要的作用。这些细胞的活动和OPN存在着密切的关系。

  4.1  OPN与血管平滑肌细胞的增殖和迁移

  血管壁的平滑肌细胞正常位于中膜,AS发生时内膜斑块中有大量的平滑肌细胞来源的泡沫细胞,血管平滑肌细胞(VSMC)的迁移和增殖是AS发生的关键内容之一。根据功能和结构不同,ASMC可以分为收缩型和合成型两种,OPN被认为是平滑肌细胞由收缩表型向合成表型转化的标志基因。由收缩型向合成型转化是VSMC增殖的必要条件。OPN与平滑肌细胞的迁移和增殖有关,Chaulet[13]等体外实验证实细胞外核苷酸尤其是尿苷三磷酸(UTP)诱导动脉平滑肌细胞的迁移是通过OPN来实现的。体外培养的或体内血管损伤部位病变中存在的VSMC可合成分泌大量的OPN,后者与细胞的粘附和迁移能力具有明显的量效和/或时效依赖关系[14],整合素 β3-粘着斑激酶(FAK)是介导VSMC迁移的重要信号途径,FAK磷酸化特异性抑制剂粘着斑相关非激酶(FRNK),可以下调β 3表达、抑制FAK磷酸化和减少粘着斑蛋白磷酸化及粘着斑形成而发挥抑制OPN,促VSMC迁移的效应[15]。OPN与VSMC结合还能刺激基质金属蛋白酶(MMP)产生,从而更利于VSMC通过细胞外基质而发生迁移。Isoda[16]用OPN转基因小鼠研究发现,在无损伤条件下主动脉中膜增厚而且OPN表达水平较高,OPN基本上来自于中膜的平滑肌细胞。增殖细胞核抗原(PCNA)染色显示中膜平滑肌细胞处于活跃增殖状态,表明OPN转基因小鼠中膜增厚归因子SMC的增殖。在损伤条件下,OPN转基因小鼠会有新生内膜的形成。一些致动脉粥样硬化的生长因子和细胞因子如:PDGF、FGF、TGFβ、血管紧张素(Ang)Ⅱ等都可以诱导血管平滑肌细胞表达OPN,用整合素拮抗剂及OPN抗体可以抑制新内膜的形成。说明调控OPN的转录和表达在动脉粥样硬化中起到重要的作用。

  4.2  OPN对巨噬细胞趋化作用

  OPN是一个强大的巨噬细胞粘附趋化因子,巨噬细胞表面表达大量与OPN有高度亲和力的受体。研究发现OPN可以诱导早期单核/巨噬细胞渗透到肾间质,并且在巨噬细胞单克隆刺激因子(M-CSF)的作用下发生增殖。心肌梗塞部位可以检测到OPN的存在,它主要由ED+巨噬细胞来表达,它参与了梗塞后炎症过程[17]。OPN主要通过βl和 β 3整合素受体以及CD44受体对巨噬细胞的粘附和迁移发挥调理作用,白介素-1(IL-l)、肿瘤坏死因子(TNF)-ɑ和PDGF能够通过活化PKC而激活OPN的转录。动脉粥样硬化时病灶处多种细胞可以表达OPN,OPN经凝血酶酶切以后,其N-末端片断能够与巨噬细胞表面的CD44受体结合,对巨噬细胞具有趋化功能:而其C-末端片断则可与细胞表面的整合素受体avβ1相互作用介导巨噬细胞的粘附和迁移[18]。Chiba[19]等把OPN转基因小鼠分成两组,分别给予高脂饮食和标准饮食3个月,用野生型小鼠作对照,也分成两组作相同的处理。结果标准饮食的小鼠没有发生动脉粥样硬化,而高脂饮食的小鼠动脉粥样硬化的发生率较高,且转基因小鼠动脉粥样硬化斑块明显比野生型小鼠的要大。同对照组相比,转基因小鼠动脉粥样硬化斑块中活化的巨噬细胞表达大量的OPN,斑块中检测到的OPN是来自于原位的巨噬细胞而不是来自于血清。说明高脂饮食条件下,表达OPN的巨噬细胞易被激活,激活的巨噬细胞可以表达OPN促进血液中更多的单核细胞向病灶处迁移,转化成巨噬细胞,从而促进AS的发展。

  4.3  OPN促进外膜成纤维细胞向内膜迁移

  AS纤维斑块病变阶段主要特征是病灶处内膜增生,形成纤维结缔组织。近年来外膜成纤维细胞对新生内膜形成的影响受到了极大的关注。研究发现在血管损伤时,外膜成纤维细胞表型发生改变,转化成肌成纤维细胞,后者可向管腔方向迁移,并增殖形成新生内膜。Li等[11]研究发现FGFl可以通过与其受体FGFR-l结合,诱导OPN表达从而介导成纤维细胞发生迁移。体外培养的大鼠血管外膜成纤维细胞在基础状态下表达一定水平的OPN  mRNA,在TGF β1诱导下,其OPNmRNA转录水平显著增高,外膜成纤维细胞转染OPN反义核酸后,细胞迁移实验发现迁移的细胞数明显低于单纯TGF  β1刺激组,而OPN正义、错配义组无此变化[20],说明OPN对外膜成纤维细胞的迁移起趋化作用。内膜损伤后可以释放多种生长因子,如TGF βl可使外膜成纤维细胞转化为肌成纤维细胞,后者使OPN表达升高并迁移至内膜后分泌OPN,使得更多的MF迁移至内膜,参与新内膜的形成。

  5  结  语

  目前OPN参与动脉粥样硬化的发生已经得到许多实验的证实,整合素受体aVβ3阻断剂和OPN中和抗体的使用可以减少新生内膜形成,但OPN参与动脉粥样硬化的具体机制还有待于深入研究。随着对OPN及其抑制剂的进一步研究,相信可以给动脉粥样硬化的预防和临床治疗提供新的措施。

【参考文献】  [1]Allan AL, George R, Vantyghem SA, et al. Role of the integrin|binding protein osteopontin in lymphatic metastasis of breast cancer[J].Am J Pathol, 2006,l69(1):233-246.

  [2] Agnihotri R, Crawford HC, Hao H, et al .Osteopontin, a novel substfate for matrix metalloproteinase-3 (stromelysin- l) and matrix metalloproteinase-7 (matrilysin)[J].J Biol Chem,2001,276(30):28261-28267.

  [3] Ashkar S, Weber GF, Panoutsakoppulou V, et al. Eta-l (osteoponin):an early component of type-l (cell-mediated) immunity[J].Science,2000,287(5454):860-864.

  [4] Dhore CR, Cleutjens JP,Lutgens E, et al. Differential expression of bone matrix regulatory proteins in human atherosclerotic plaques[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2001,21(12):1998-2003.

  [5] O'Regan A, Berman JS.Osteopontin:A key cytokine in cell|mediated and granulomatous inflammation[J].Int J EXP Pathol,2000,81:373-390.

  [6]Iizuka K, Murallami T, Kawaguchi H. Pure atmospheric pressure promotes an expression of osteopontin in human aortic smooth muscle cells[J].Biochem Biophys Res Commun,2001,283(2):493-498.

  [7] Hsieh TJ, Chen R, Zhang SL, et al. Upregulation of osteopontin gene expression in diabetic rat proximal tubular cells revealed by microarray profiling[J].Kidney Int,2006,69(6): 1005-1015.

  [8] Takemoto M, Yokote K, Yamazaki M, et al. Enhanced expression of osteopontin by high glucose. Involvement of osteopontin in diabetic macroangiopathy[J].Ann N Y Acad Sci,2000,902:357-363.

  [9] Choinder P,Sodhi, Saroini A,et al. Hypoxia stimulates osteopontin expression and proliferation of cultured vascular smooth muscle cells potentiation by high glucose[J].Diabetes,2001,50(6): 1482-1490.

  [10]胡 敏,于金德.干扰素对大鼠平滑肌细胞内骨桥蛋白表达的影响[J].中华心血管病杂志,2003,31(2):136-139.

  [11]Zi G,Oparil S,Kelpke SS,et al. Fibroblast growth factor receptor-l signaling induces osteopontin expression and vascular smooth muscle cell|dependen adventitial fibroblast migration in vitro[J].Circulation,.2002,106:854-859.

  [12] Renault MA, Jalvy S, Belloc I, et al. AP-l is involved in UTP-induced osteopontin expression in arterial smooth muscle cells[J].Circ Res,2003,93(7):674-681.

  [13] Chaulet H, Desgranges C, Renault MA,et al. Extracellular nucleotides induce arterial smooth muscle cell migraion via osteopontin[J].Circ Res,2001,89(9):772-778.

  [l4]Wen JK, Han M, Zheng B,et al.Comparison of gene expression pattems and migration capability at quiescent and proliferating vascular smooth muscle cells stimulated by cytokines[J].Life Sci,2002,70(7):799-807.

  [15]刘智敏,韩 梅,温进坤.粘着斑相关非激酶对骨桥蛋白促血管平滑肌细胞迁移的抑制作用及分子机制[J].中国生物化学与分子生物学报,2004,20(1):131-137.

  [l6] Isoda K, Nishikawa K, Kamezawa Y,et al. Osteopontin plays an improtant ro1e in the development of medial thickening and neointimal formation[J].Circ Res, 2002,91(1):77-82.

  [l7] Shin T,Ahn M, Kim H, et al. Increased expression of osteoponin in the heart tissue of Lewis rats with experimental autoimmune myocarditis[J].J Vet Med Sci,2006,68(4):379-382.

  [l8] Hirama M, Takahashi F, Takahashi K, et al.Osteopontin overproduced by tumor cells acts as a potent angiogenic facor contributing to tumor growth[J]. Cancer Lett, 2003,198(1):107-117.

  [l9]Chiba S, Okamoto H, Kon S, et al. Development of atherosclerosis in osteopontin transgenic mice[J].Heart Vessels, 2002,16(3):111-117.

  [20]孙爱军,高平进,朱鼎良,等.骨桥蛋白在血管外膜中的表达及其对外膜成纤维细胞迁移的影响[J].中华心血管病杂志[J].2003,31(5):361-364.

 

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