硼替佐米诱导ABCG2High耐药鼻咽癌细胞高表达NKG2D配体的实验研究
发表时间:2010-04-27 浏览次数:457次
作者:黄宇贤,王 杨,胡亮杉,宋朝阳,郭坤元 作者单位:510282 广州,南方医科大学珠江医院血液科
【摘要】 目的 探讨硼替佐米诱导高表达ABCG2耐药鼻咽癌细胞对AlloNK细胞杀伤敏感性的机制。方法 利用免疫磁珠技术分离ABCG2High CNE2/DDP细胞及AlloNK细胞,流式细胞技术检测分离后细胞纯度及经硼替佐米处理前后靶细胞NKG2D配体表达率,LDH释放测定法检测经硼替佐米处理前后ABCG2HighCNE2/DDP细胞对AlloNK细胞的杀伤敏感性。结果 ABCG2HighCNE2/DDP细胞分离后ABCG2表达率为(91.40±2.32)%,分选后NK细胞CD3-CD16+CD56+细胞的纯度达90%以上。经硼替佐米处理之后靶细胞MICA、MICB、ULBP1、ULBP2、ULBP3表达率,由药物处理之前的(2.92±0.33) %、(4.27±0.33)%、(5.80±0.62)%、(11.10±3.15)%、(7.75±1.14)%分别上升到(17.52±2.04)%、(12.53±3.68)%、(15.24±2.91)%、(62.02±6.85)%、(35.69±3.23)%。在效靶比为10∶1、20∶1、AlloNK细胞对硼替佐米处理前后ABCG2HighCNE2/DDP细胞的杀伤率分别为(15.32±13.86)%、(27.26±6.81)%及(35.06±5.10)%、(52.34±4.78)%。处理前后杀伤率差异有统计学意义(F=26.03 ,P=0.000)。结论 硼替佐米通过诱导肿瘤细胞高表达NKG2D配体(MICA/B、ULBP13),使肿瘤细胞对AlloNK细胞的杀伤敏感性增强。
【关键词】 硼替佐米; ABCG2; 同种异体自然杀伤细胞; NKG2D; 杀伤敏感性
Induction of Expression of Ligands for NKG2D Receptor in ABCG2High Nasopharyngeal Carcinoma by Bortezomib
HUANG Yuxian,WANG Yang,HU Liangshan,SONG Chaoyang,GUO Kunyuan
Department of Hematology,Zhujiang Hospital,Southern Medical University,Guangzhou 510282,China
Corresponding Author: GUO Kunyuan,Email: gzyuan@pub.guangzhou.gd.cnAbstract:Objective To investigate the mechanism on the effects of improving cytotoxic sensitivity of ABCG2High CNE2/DDP cells to AlloNK cells which exerted by bortezomib.Methods ABCG2HighCNE2/DDP cells and AlloNK cells were isolated by magnetic activated cell sorting (MACS).Flow cytometry was used to evaluate the purity of isolated cells and the expression of NKG2Dligands on target cells before and after incubation with bortezomib.Subsequently,the cytotoxic sensitivity of treated and untreated ABCG2High CNE2/DDP cells to AlloNK cells were measured by LDH releasing assay.Results The expressions of ABCG2 in ABCG2High CNE2/DDP cells were (91.40±2.32)%.More than 90% of isolated NK cells showed tobe CD3-CD16+CD56+ cells which would definitely meet the needs of experiments.The expressions of MICA、MICB、ULBP1、ULBP2、ULBP3 on target cells incubated with bortezomib have respectively increased from (2.92±0.33)%,(4.27±0.33)%,(5.80±0.62)%,(11.10±3.15)%,(7.75±1.14)% to (17.52±2.04)%、(12.53±3.68)%、(15.24±2.91)%、(62.02±6.85) %、(35.69±3.23)%.At the E∶T ratio of 10∶1 and 20∶1,the cytotoxic sensitivity of ABCG2HighCNE2/DDP cells to AlloNK cells increased from (15.32±13.86)% and (27.26±6.81)% in untreated groups to (35.06±5.10)% and (52.34±4.78)% in bortezomib treated groups.Data above showed that cytotoxic sensitivity of target cells in each group before and after bortezomib treatment had significant differences (F=26.03 P=0.000).Conclusion Bortezomib can upregulate expressions of NKG2Dligands (MICA/B、ULBP13) in ABCG2High nasopharyngeal carcinoma cells,which resulted in higher cytotoxic sensitivity to AlloNK cells.
Key words:Bortezomib; ABCG2; AlloNK cell; NKG2D; Sensitivity cytotoxicity
硼替佐米(Bortezomib,PS341,VELCADE),商品名为万珂,是一种剂量依赖的,可逆的蛋白酶体抑制剂,也是第一个应用于临床治疗的蛋白酶体抑制剂。它主要通过特异性阻断泛素蛋白酶体通路起作用,能够有效抑制多种肿瘤细胞生长、血管生成和迅速诱导细胞凋亡,不但对多发性骨髓瘤、淋巴瘤有良好的疗效,而且可以用于治疗多种实体瘤,如甲状腺癌、乳腺癌、肺癌、胰腺癌、前列腺癌等[15]。最近研究资料显示,硼替佐米能增加肿瘤细胞对免疫治疗的敏感性,但其确切的机制尚不清楚。本文利用免疫磁珠技术分离ABCG2HighCNE2/DDP细胞和AlloNK细胞,流式细胞术检测用硼替佐米处理前、后靶细胞NKG2D配体表达率的变化,LDH释放法检测靶细胞对AlloNK细胞杀伤敏感性的变化,探讨硼替佐米诱导耐药鼻咽癌细胞对AlloNK细胞杀伤敏感性的变化及其机制,为AlloNK细胞过继性免疫化疗奠定理论基础。
1 材料与方法
1.1 材料及器材
试剂:硼替佐米(西安杨森),抗NKG2D配体(antiMICA/B单抗、antiULBP13单抗,BD公司),PE标记羊抗鼠IgG1(eBioscience公司),PE标记的鼠抗人ABCG2单抗(eBioscience公司),抗CD56免疫磁珠、抗PE免疫磁珠(Miltenyi Biotec公司,德国),杀伤活性检测试剂盒(Cytotox96 nonradioactive cytotoxocity assay,Promega公司),胎牛血清(杭州四季青),RPMI 1640(Gibco公司)。仪器:5810R高速低温离心机(Eppendorff 公司)、2010酶标仪(郑州赛博仪器公司)、Olympus倒置荧光显微镜(Olympus公司,日本),二氧化碳培养箱(Thermo公司,美国),Beckman Coulter EPICS AITRA型流式细胞仪(Beckman Coulter公司),电子天平(CE公司,德国)。
1.2 方法
1.2.1 高表达ABCG2 CNE2/DDP细胞和AlloNK细胞分离及表达率检测 (1)ABCG2HighCNE2/DDP细胞的分离纯化:收集CNE2/DDP细胞,PBS洗涤两次,计数细胞,重悬于PBS中。按细胞密度为1×106/ml加0.5μg PE标记的鼠抗人ABCG2单抗,4℃孵育30min。离心,弃上清,重悬,按细胞密度为1×107l/ml加入20μl antiPE免疫磁珠,作细胞阳性分选,流式细胞仪分析ABCG2HighCNE2/DDP纯度(高表达ABCG2的CNE2/DDP细胞记为ABCG2HighCNE2/DDP)。(2) AlloNK细胞的分离纯化:采用常规密度梯度离心法分离健康人外周血单个核细胞,PBS洗涤2次,计数细胞,CD56 MicroBeads作细胞阳性分选,获得CD3-CD56+细胞,流式细胞仪检测CD3-CD16+CD56+细胞的纯度。
1.2.2 细胞培养 含有10%胎牛血清、100u/ml青霉素、100μg/ml链霉素、3μmol/L DDP的RPMI 1640培养基,37℃、5%CO2常规培养,实验中所用细胞均处于对数生长期。培养NK细胞时加入1000u/ml的rhIL2。
1.2.3 流式细胞术分析经硼替佐米处理前后靶细胞NKG2D配体表达率 分别收集未经硼替佐米处理及经硼替佐米100ng/ml共孵育的ABCG2HighCNE2/DDP细胞,PBS洗涤2次,计数细胞,按细胞密度为1×106/100μl各加入2μg鼠抗人NKG2D配体(MICA、MICB、ULBP1、ULBP2、ULBP3)单抗,4℃孵育30min ,PBS洗涤两次,加入PE标记羊抗鼠单抗,同型IgG1(Pharmingen公司)作为阴性对照抗体,4℃孵育20min,PBS洗涤,用流式细胞仪分析样本中1×104个细胞中阳性细胞数,计算荧光标记阳性细胞的百分率,实验重复3次。
1.2.4 LDH释放测定法检测AlloNK细胞对经硼替佐米处理前后靶细胞杀伤活性 收集ABCG2HighCNE2/DDP细胞,分三组。处理组:硼替佐米100ng/ml共孵育4h的ABCG2HighCNE2/DDP细胞;未处理组:未经硼替佐米预处理的ABCG2HighCNE2/DDP细胞;对照组:K562细胞,用含5%的胎牛血清RPMI 1640完全培养液调整细胞密度为1×105/ml,加于96孔板中,每孔50μl。以新鲜分离AlloNK细胞为效应细胞,按不同效靶比(10∶1、20∶1)分别加入不同量的效应细胞各50μl。各组均设3个复孔,置37℃、5% CO2条件下共孵育4h后,离心,吸取50μl上清,加入96孔平底酶标板中,加入50μl LDH底物反应液,室温放置30min,每孔加50μl反应终止液。酶标仪上波长490nm处以空白组为基准测OD值。计算NK细胞杀伤活性(%)=(实验组OD值-靶细胞自然释放组OD值-效应细胞自然释放组OD值)÷(靶细胞最大释放组OD值靶细胞自然释放组OD值)×100%。
1.3 统计学方法
用SPSS13.0软件进行数据处理,数据以±s表示,药物处理前后靶细胞NKG2D配体表达率采用配对t检验,靶细胞对AlloNK细胞杀伤敏感性比较采用单因素方差分析,差异有统计学意义(P<0.05)。
2 结果
2.1 ABCG2HighCNE2/DDP细胞、AlloNK细胞分离纯度及表达率检测
流式细胞仪检测结果显示ABCG2HighCNE2/DDP细胞的ABCG2表达率为(91.40±2.32)%,其细胞异形性明显,见图1。分选后NK细胞镜下观察,细胞较小,呈圆形,细胞形态良好,流式细胞仪检测结果显示分选后CD3-CD16+CD56+细胞的纯度达90%以上,符合实验要求,见图2。
2.2 流式细胞术分析经硼替佐米处理前后靶细胞NKG2D配体表达率
流式细胞术分析结果显示:未经硼替佐米处理的ABCG2HighCNE2/DDP细胞NKG2D配体MICA、MICB、ULBP1、ULBP2、ULBP3表达率分别为(2.92±0.33)%、(4.27±0.33)%、(5.80±0.62)%、(11.10±3.15)%、(7.75±1.14)%,五种配体均弱表达或无表达;经硼替佐米处理后,NKG2D配体 MICA、MICB、ULBP1、ULBP2、ULBP3表达率明显升高,分别为(17.52±2.04)%、(12.53±3.68)%、(15.24±2.91)%、(62.02±6.85)%、(35.69±3.23)%,处理前后靶细胞NKG2D配体表达率进行配体t检验差异有统计学意义(t=11.38,P=0.008;t=8.39,P=0.05;t=9.03,P=0.05;t=13.85,P=0.005;t=12.17,P=0.006),见图3。
2.3 LDH释放测定法检测AlloNK细胞对硼替佐米处理前后靶细胞杀伤活性
LDH释放测定法结果显示:AlloNK细胞对ABCG2HighCNE2/DDP细胞及K562细胞的杀伤活性随着效靶比升高而增强,靶细胞预处理前,效靶比为10∶1时,杀伤率分别为(15.32±13.86)%、(36.41±4.01)%;效靶比为20∶1时,杀伤率上升到(27.26±6.81)%、(52.33±5.49) %;说明AlloNK细胞具有正常杀伤能力。靶细胞经硼替佐米处理后,在效靶比为10∶1、20∶1时,杀伤率由处理前的(15.32±13.86)%、(27.26±6.81)%上升到(35.06±5.10)%、(52.34±4.78)%,另外,靶细胞预处理后,对AlloNK细胞杀伤敏感性与K562对照细胞杀伤敏感性持平。在这两种效靶比时,各组靶细胞的杀伤敏感性差异有统计学意义(F=26.03,P=0.000),见图4。
3 讨论
ABCG2是新近发现的耐药相关蛋白,属于ATP结合盒式(ATPbinding cassette,ABC)转运蛋白家族的G亚家族成员。ABCG2介导的多药耐药是非典型的多药耐药(multidrug resistance,MDR),对米托蒽醌、柔红霉素、拓扑替康、SN38、依利替康等药物交叉耐药,而对Pgp、MRP介导的MDR作用底物顺铂、长春新碱、紫衫醇不产生交叉耐药[6]。另外,有部分学者认为ABCG2专一表达于SP细胞,可能是干细胞的潜在标志[7]。对于这一类多药耐药肿瘤细胞,传统的治疗方法未能取得满意的疗效,这可能与肿瘤耐药发生机制的复杂性有关,因此对高表达ABCG2耐药鼻咽癌的辅助治疗需要联合其他治疗方法或另辟其径。
近年来的研究资料表明,NK细胞具有广泛抗肿瘤作用,包括体外对多种肿瘤细胞系(急、慢性白血病,淋巴瘤,骨髓瘤,黑色素瘤,前列腺癌,乳腺癌)具有杀伤活性,并且在动物移植瘤模型中表现出良好的抑瘤活性[89]。NK细胞发挥功能主要依赖NK细胞表面受体与多种表达MHC或非MHC类配体的细胞结合,传递抑制性或活化性信号,调节NK细胞的活性;而NK细胞活化性信号通路(NKG2DDAP10)介导杀伤活性强于杀伤细胞免疫球蛋白样受体(Killer cell immunoglobulinlike receptor,KIR)与MHCI类结合后形成的抑制性信号[1011]。另外,体外干预因素如细胞因子(IL2、IL15、IL18)、抗肿瘤分子靶向药物(Iressa、Glivec)等能调节NK细胞与靶细胞活化性配受体的表达,从而提高NK细胞杀伤活性或提高肿瘤细胞对NK细胞的杀伤敏感性[1214]。本研究中,靶细胞未经硼替佐米处理前,靶细胞五种NKG2D配体弱表达或无表达,其杀伤敏感性也较低。经硼替佐米处理后,ABCG2HighCNE2/DDP细胞五种NKG2D配体表达率比药物处理之前的明显上升,表明硼替佐米能诱导NKG2D配体,随着药物处理后靶细胞NKG2D配体表达率的升高,AlloNK细胞对靶细胞的杀伤活性比药物处理之前明显增强。在分析AlloNK细胞对靶细胞的杀伤活性时,学者们习惯用K562细胞作为NK细胞杀伤活性检测的对照细胞,主要是因为它是NK细胞杀伤的敏感细胞株,不表达抑制性信号,而高表达NK细胞活化性信号的NKG2D配体[8],作者同样利用K562细胞作为对照细胞来检测NK细胞杀伤活性。
硼替佐米是一种对26S蛋白酶体具有高度特异性抑制能力的二肽基硼酸化合物,它通过抑制蛋白酶体20S催化中心的活性,从而选择性抑制体内某些具有重要调控作用的蛋白质的降解,进一步使细胞分裂停滞在G2/M期,导致细胞发生凋亡[1516]。最近研究也证实硼替佐米能有效降低化疗药物诱导凋亡的阈值,并能逆转耐药,同时消除细胞黏附介导所致的耐药,从而使肿瘤细胞对化学治疗、放射治疗更敏感;另外,ValésGómez M认为硼替佐米可以诱导肿瘤细胞表达免疫效应细胞活化性配体(MICA/B、ULBPS),增加肿瘤细胞免疫治疗敏感性[17]。从上述的实验结果也验证了硼替佐米能选择性诱导肿瘤细胞NKG2D配体的表达,从而使肿瘤细胞对NK细胞的杀伤敏感性增强,但硼替佐米具体通过什么机制诱导靶细胞高表达NKG2D配体仍有待进一步研究。
【参考文献】
[1] Lashinger LM,Zhu K,Williams SA,et al.Bortezomib abolishes tumor necrosis factorrelated apoptosisinducing ligand resistance via a p21dependent mechanism in human bladder and prostate cancer cells[J].Cancer Res,2005,65(11): 49024908.
[2] Nawrocki ST,Carew JS,Pino MS,et al.Bortezomib sensitize spancreatic cancer cells to endoplasmic reticulum stressmediated apoptosis[J].Cancer Res,2005,65(24): 1165811666.
[3] Anan A,BaskinBey ES,Isomoto H,et al.Proteasome inhibition attenuates hepatic injury in the bile ductligated mouse[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2006,291(4): 709716.
[4] Mitsiades CS,McMillin D,Kotoula V,et al.Antitumor effects of the proteasome inhibitor bortezomib in medullary and anaplastic thyroid carcinoma cells in vitro [J].J Clin Endocrinol Metab,2006,18(3): 332336.
[5] Ishii Y,Pirkmaier A,Alvarez JV,et al.cyclin D1 overexpression and response to bortezomib treatment in abreast cancer model[J] .J Natl Cancer Inst,2006,98(17): 12381247.
[6] 郝立宏,杨佩满.转运蛋白及其介导的肿瘤多药耐药研究[J].肿瘤防治研究,2005,32(1):5960.
[7] Donnenberg VS,Donnenberg AD.Multiple drug resistance in cancer revisited: the cancer stem cell hypothesis[J].J Clin Pharmacol,2005,45(8):872877.
[8] Yan Y,Steinherz P,Klingemann HG,et al .Antileukemia activity of a natural killer cell line against human leukemia[J].Clin Cancer Res,1998,4(11):28592868.
[9] Tam YK,Miyagawa B,Ho VC,et al .Immunotherapy of malignant melanoma in a SCID mouse model using the highly cytotoxic natural killer cell line NK292[J].J Hematother,1999,8(3) :281290.
[10]Wu J,Song Y,Bakker AB,et al.An Activating Immunoreceptor Complex Formed by NKG2D and DAP10[J].Science,1999,285(5428):730732.
[11]Smyth MJ,Godfrey DI,Trapani JA,et al.A fresh look at tumor immunosureillance and immunotherapy [J].Nat Immunol,2001,2(4): 293299.
[12]van der Merwe PA .Formation and function of the immunological synapse [J].Curr Opin Immunol,2002,14(3):293298.
[13]Vyas YM,Mehta KM,Morgan M,et al.Spatial organization of sign Transduction molecules in the NK cell immune synapses during MHC class Iregulated noncytolytic and cytolytic interactions[J].J Immunol,2001,167(8): 43584367.
[14]Bromley SK,Burack WR,Johnsos KG,et al.The immunologic synapse [J].Annu Rev Immunol,2000,21:375396.
[15]Adams J.Development of the Proteasome Inhibitor PS341[J].The Oncologist,2002,7(1): 916.
[16]Le Blanc R,Catley LP,Hideshima T,et al.Proteasome inhibitor PS2341 inhibits human myeloma cell growth in vivo and prolongs survival in amurine model[J].Cancer Res,2002,62(17): 49965000.
[17]ValésGómez M,Chisholm SE,CassadyCain RL,et al.Selective induction of expression of a ligand for the NKG2D receptor by proteasome inhibitors[J].Cancer Res,2008,68(5): 15461554.