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《消化病学》

肠易激综合征与炎症关系的研究进展

发表时间:2011-10-08  浏览次数:336次

  作者:安钰,孙晓宁  作者单位:1.宁夏医学院2006级研究生班,宁夏 银川 ;2.海南省人民医院,海南 海口

  【关键词】 结肠疾病,功能性;炎症;综述文献

  肠易激综合征(irritable bowel syndrome, IBS)是以腹痛或腹部不适,伴有大便性状及排便习惯改变为特征的功能性肠道疾病,是消化科常见的疾病之一。现普遍认为,IBS的病因是多种因素相互作用的结果,其发病机制复杂,可能与精神心理因素、胃肠动力学异常、内脏高敏感性、食物不耐受、基因、感染、肠道的轻度炎症等多方面因素有关,其中肠道的轻度炎症是近年来关注的热点。本文就近年来关于IBS与炎症关系的研究进展做一简要综述。

  1 IBS免疫细胞的异常改变

  1.1 肥大细胞

  肠道中的肥大细胞(mast cell, MC)是一种既具有免疫活性,又能分泌多种介质的重要免疫细胞。MC主要位于黏膜血管、淋巴和神经周围,是肠道主要的抗原感受器,参与肠黏膜的免疫调节。当某种抗原刺激机体免疫系统,可引起感觉神经末梢兴奋及信号传递,并诱导机体产生IgE抗体,抗原和抗体的结合可引起肥大细胞活化、脱颗粒,并释放多种生物活性物质组胺、5羟色胺、前列腺素和细胞因子等。早在1962年,Hiatt等在研究严重结肠炎患者切除的结肠肌层组织时最早提出了IBS和免疫系统存在关系这一观念。研究发现,在绝大多数IBS 患者中,末端回肠和盲肠的肥大细胞数目明显升高,除此之外,未见其他细胞增多[1]。董文珠等[2]研究发现,MC与P物质(substance P, SP)和血管活性肠肽(vasoactive intestinal polypeptide, VIP)表达密切相关,且MC与SP和VIP免疫反应阳性神经末梢解剖位置毗邻或有“膜膜”接触存在,提示两者之间的存在双向联系,可能与IBS的内脏感觉高敏感性相关联。Barbara等[3]也研究发现,肠神经纤维毗邻部位的MC数目与IBS患者腹痛的频率和程度呈正相关,认为MC的浸润和介质释放与IBS患者腹痛感觉有关。近年来也有学者对IBS患者小肠MC分布进行研究,发现末端回肠黏膜MC[4]和近端空肠MC明显增多[5]。在动物实验中也发现乙酸诱导的结肠炎后IBS大鼠的内脏敏感性明显增高,虽然其结肠MC数量与对照组类似,但脱颗粒的MC数量明显增高,而MC稳定剂可减少MC脱颗粒率并降低内脏敏感性[6]。上述研究提示,IBS患者自近端空肠至结肠均存在MC数量异常,而且MC可能承担着连接免疫和神经机制的桥梁作用。

  1.2 淋巴细胞

  肠黏膜是获得性免疫应答重要的外周淋巴组织。肠黏膜淋巴细胞主要包括上皮内淋巴细胞(intraepithelial lymphocyte, IEL)和黏膜固有层淋巴细胞(lamina propria lymphocyte, LPL)。IEL主要为CD3+细胞,其中80%具有CD8表面标志,LPL主要为CD4+ T淋巴细胞。

  国内外研究表明,肠道急性感染后,可在部分患者引起IBS(称为感染后IBS, PI IBS),尽管病原体已被清除,但肠道仍有轻度炎症改变,表现为上皮内和黏膜固有层淋巴细胞、巨噬细胞及嗜铬细胞增加。这种感染后炎症的持续和IBS症状的反复是因为感染引起肠道的通透性增加,进而使得黏膜下免疫系统激活,从而引起神经肌肉功能的改变。近年来研究发现,在IBS发病前无胃肠道感染史的IBS 患者,肠黏膜组织学检查也发现炎症和免疫激活现象,这使得IBS的非器质性疾病的定义受到了挑战。Chadwick 等[7]首先提出了无急性胃肠炎史的IBS患者肠黏膜存在炎症,在77例符合罗马标准的IBS患者中有38例患者尽管结肠镜检查正常,但免疫病理学检查显示上皮内淋巴细胞增加1.8倍,固有层CD3+细胞增加2倍,CD25+细胞增加6.5倍;有31例患者存在非特异性显微镜下炎症,免疫病理学显示淋巴细胞、嗜中性粒细胞及肥大细胞明显增加;有8例患者符合淋巴细胞性结肠炎。这一发现表明炎症和免疫激活不仅局限于感染后的IBS患者。但最近有研究得到了不同的结论,该研究发现IBS患者和正常对照组外周血和结肠黏膜CD25+调节性T细胞的数量无差别,认为IBS患者肠黏膜低度的炎症性改变与CD25+调节性T细胞的数量和功能改变无关[8]。韩炜等[9]对IBS患者外周血中T细胞亚型进行研究,发现IBS患者外周血CD4+ T细胞百分率下降和CD4+/CD8+比例失调明显,腹泻型和交替型比值下降,便秘行比值升高,在后来的研究中得到了学者的证实[10]。这更进一步说明IBS与免疫异常有关,且不同亚型之间的免疫学机制不同。随着神经胃肠病学发展,有学者发现,IBS肠黏膜不仅存在轻度炎症和免疫激活,而且肠神经丛内有淋巴细胞的低度浸润,并有神经元退化现象[11]。这一现象得到了学者的广泛认可,认为肠神经系统异常是胃肠动力障碍和感觉过敏的基础,而肠神经的可塑性改变(包括肠神经元的退化、缺失,神经介质释放及受体系统改变)是由肠道炎症引起[12]。这提示肠黏膜淋巴细胞也可能在神经系统和肠道之间起桥梁作用,值得进一步探讨。动物实验发现T细胞缺乏小鼠感染后IBS模型中肠嗜铬细胞和MC增生受到抑制,说明T细胞在肠嗜铬细胞和MC增生中也起重要作用[13]。以上研究表明,IBS与免疫之间存在一定的相关性,但研究尚在初始阶段,关于免疫如何影响IBS发病以及那些原因引起IBS免疫及炎症改变,至今尚不清楚。

  2 IBS炎症性细胞因子的异常改变

  IBS的肠道炎症不尽表现在免疫细胞的异常变化,而且促炎症性细胞因子与抗炎症性细胞因子的失衡也是目前研究的热点。

  2.1 促炎性细胞因子

  促炎性细胞因子包括白细胞介素(IL)家族中的IL1、IL6、IL8、IL12、IL18及肿瘤坏死因子α(TNFα)、干扰素γ((INFγ)等,它们在肠道中发挥促炎症性作用并充当黏膜损伤介质。

  王利华等[14]研究发现,在有痢疾/肠炎史的IBS患者中,其末端回肠和直乙状结肠交界处肠黏膜内IL1β mRNA的表达明显增高。孙继中等[15]的一项研究也发现IBS患者回盲部黏膜IL1β表达增加。后有学者应用酶联免疫吸附实验方法对腹泻型及便秘型IBS患者血清中TNFα和IL8的含量进行检测,发现腹泻型IBS患者血清中TNFα和IL8均较正常升高,且TNFα与IL8呈正相关性,而便秘型IBS患者血清中TNFα和IL8与正常无显著性差异。提示腹泻型IBS有炎症因子活化及其之间的相互协同作用,便秘型IBS与腹泻型IBS的免疫紊乱有着不同的病理生理机制[16]。李延青等[17]对IBS患者肠黏膜Th1型细胞因子(INFγ和IL12)和Th2型细胞因子(IL4和IL10)表达情况研究发现,腹泻型IBS患者肠黏膜INFγ和IL12表达显著增加,IL10表达呈下降趋势,而便秘型IBS患者细胞因子表达与对照组无差异。这说明腹泻型IBS患者内存在Th1/ Th2漂移,Th1反应增强。新近研究报道,IBS外周血促炎性细胞因子IL6和IL18较对照组显著升高[18]。上述研究提示,不同分型的IBS发病存在病理生理学差异,促炎性细胞因子可作为腹泻型IBS潜在的生物学标记,但尚需进一步研究证实。

  2.2 抗炎性细胞因子

  抗炎性细胞因子包括IL1rα、IL4、IL10、IL11、IL13及转化生长因子β(TGFβ),它们主要以抗炎的方式起作用。Gonsalkorale等[19]研究发现,IBS患者IL10基因频率较对照组显著降低,而TGFβ1的基因型没有改变。张海燕等[20]研究发现腹泻型IBS患者外周血IL4、IL10的水平较正常组显著降低。徐海珍等[21]研究结果与其相似,发现腹泻型IBS中确实存在促炎与抗炎因子的失衡,主要表现为抗炎因子IL10的降低。新近一项研究发现,IBS患者外周血抗炎性细胞因子IL13水平与对照组相比呈下降趋势,从而造成促炎因子与抗炎因子的表达失衡[18]。这说明,细胞因子对炎症反应的调节不平衡可能是导致IBS肠道炎症及其持续存在的一个重要机制。

  3 IBS对炎症的遗传易感性

  目前对IBS患者持续存在肠道炎症的原因了解甚少,除了先期的肠道感染外,遗传因素、不明确的食物过敏以及肠道菌群的紊乱都可导致IBS患者肠道黏膜的低度炎症。近年来研究显示部分患者可能存在促炎和抑炎失衡的遗传素质。IL10作为重要的抗炎性细胞因子,对炎症反应起着重要的调控作用。Gonsalkorale等[19]研究发现,IBS患者IL10基因频率较对照组显著降低,提示IL10产生减少的个体更容易发生IBS。但Van der veek等的研究结果与此相反,认为IBS IL10的基因频率与对照组无差异,而TNFα合成型基因频率显著增高是IBS肠道炎症持续的原因[22]。

  海南医学院学报 Vol.15 No.2 Feb.2009Runx3 基因为一种新近发现的肿瘤抑制基因,因其表达下调在人类多种恶性肿瘤的发生、发展过程中起重要作用而倍受关注。近年来研究发现其在免疫细胞的发生、发展中起重要作用,尤其在淋巴细胞的发育中扮演重要角色。研究发现Runx3 对CD8+T细胞的功能性分化及其分化中CD4的沉默起重要作用,Runx3基因敲除后CD8+T细胞的数目、增殖及杀伤能力下降[23]。另外,Runx3作为TGFβ信号传导通路的一个重要转录调节因子,介导TGFβ 对DC的成熟抑制作用,Runx3基因敲除后,一方面DC细胞成熟加快,且上调主要组织相容性复合物(MHC)Ⅱ分子和共刺激分子的表达,刺激并使 T细胞成熟和分化加快。另一方面,DC的表型发生改变,表现为CD11bCD8α+ DC显著增加,而CD11b+CD8α DC则减少,两者分别与Th1和Th2反应有关[24]。新近研究报道,Runx3基因敲除小鼠出现肠道自发性炎症,主要以淋巴细胞单核巨噬增多为特征。细胞因子的分析表明,小鼠出现Th1细胞和Th2细胞的混合性反应,但前者为主[25]。然而,Runx3功能缺失引起的肠道炎症改变是否与其引起的免疫功能紊乱有关?Runx3是否参与了IBS肠道炎症的发生?值的进一步探讨。

  4 展望

  越来越多的证据表明, IBS 患者的肠黏膜内存在低度炎症,但其在IBS 发病中的作用远未阐明。对低度炎症所作的有限研究主要集中于既往有胃肠感染的IBS 患者,还需更多的研究来阐明哪类IBS患者更易发生肠道低度炎症以及炎症在感觉动力障碍及症状发生中的作用。Runx3作为一种新的转录调节因子,其从多个方面影响免疫细胞的发生、发展。然而,其影响肠道炎症机制及是否与IBS肠道炎症发生存在相关性,目前国内尚未有报道,需要更深入的研究进一步探讨,有待于为IBS的发病提供新的遗传学基础。

  【参考文献】

  1 O'sullivan M, Clayton N, Breslin NP, et al. Increased mast cells in the irritable bowel syndrome[J]. Neurogastroenterol Motil, 2000,12(5):449457.

  2 董文珠, 邹多武, 李兆申, 等.肠易激综合征内脏高敏感性机制研究 [J].中华消化杂志,2004,24(1):1822.

  3 Barbara G, Stanghellini V, De Glorgio R, et al. Activated mast cells in proximity to colonic nervers correlate with abdominal pain in irritable bowel syndrome [J]. Gastroenterology,2004,126(3):693702.

  4 王深皓, 董蕾, 罗金燕,等.肠易激综合征小肠黏膜肠嗜铬细胞和肥大细胞的病理表现[J]. 第四军医大学学报,2007,28(19):17891792.

  5 Guilarte M, Santos J, De Torres I, et al. Diarrhoeapredominant IBS patients show mast cell activation and hyperplasia in the jejunum [J]. Gut,2007,56(2):203209.

  6 La JH, Kim TW, Sung TS, et al. Role of mucosal mast cells in visceral hypersensitivity in a rat model of irritable bowel syndrome [J]. J Vet Sci, 2004,5(4):319324.

  7 Chadwick VS, Chen W, Shu D, et al. Activation of the mucosal immune system in irritable bowel syndrome [J]. Gastroenterology, 2002,122(7):17781783.

  8 Holmen N, Isaksson S, Simren M, et al. CD4+CD25+ regulatory T cells in irritable bowel syndrome patients [J]. Neurogastroenterol Motil, 2007,19(2):119125.

  9 韩炜,李君曼,陈建,等.肠易激综合征患者细胞免疫状态及其临床意义[J]. 山东大学学报(医学版),2003,41(2):120122.

  10 杨廷旭,张正坤,曾海龙,等.结肠粘膜肥大细胞活化及外周T淋巴细胞亚群变化在肠易激综合征发病中的作用[J].青岛医药卫生,2008,40(2):8587.

  11 Trnblom H, Lindberg G, Nyberg B, et al. Fullthickness Biopsy of the jejunum reveals inflammation and enteric neuropathy in irritable bowel syndrome [J]. Gastroenrerology,2002,123(6):19721978.

  12 Vasina V, Barbara G, Talamont L, et al. Enteric neuroplasticity evoked by inflammation [J]. Auton Neurosci,2006,30(126127):264272.

  13 Wheatcroft J, Wakelin D, Smith A, et al. Enterochromaffin cell hyperplasia and decreased serotonin transporter in a mouse model of postinfectious bowel dysfunction [J]. Neurogastroenterol Motil, 2005,17(6):863870.

  14 王利华,方秀才, 潘国忠.肠道感染与肠易激综合征[J].中华内科杂志,2002,41(2):9093.

  15 孙继中, 王巧民,丁西平,等.肠易激综合征患者结肠黏膜神经肽和IL1β变化及其意义[J].胃肠病学与肝病学杂志,2007,16(3):219222.

  16 张茹,王福贤.肠易激综合征患者IL8和TNFα含量变化的意义[J].临床消化病杂志,2004,16(4):167168.

  17 李延青,张海燕,左秀丽.等.肠易激综合征患者肠黏膜Th1/ Th2漂移的研究[J].中华消化杂志,2004,24(12):728731.

  18 梁海清,王世和,李延青,等.肠易激综合征患者外周血炎性细胞因子表达失衡的分析[J].胃肠病学,2008,13(2):111113.

  19 Gonsalkorale WM, Perrey C, Pravica V, et al. Interleukin 10 genotypes in irritable bowel syndrome: evidence for an inflammatory component [J]. Gut,2003,52(1):9193.

  20 张海燕,吴萍,李延青.等.肠易激综合征患者的免疫学机制探讨[J].胃肠病学和肝病学杂志,2006,15(3):285287.

  21 徐海珍,谢建群,施斌,等.腹泻型肠易激综合征大鼠结肠黏膜炎性细胞因子的表达及温中健脾方对其影响的研究[J].上海中医药杂志,2007,41(6):5972.

  22 Van der veek PP, Van den berg M, De kroon YE, et al. Role of tumor necrosis factoralpha and interleukin10 gene polymorphisms in irritable bowel syndrome [J]. Am J Gastroenterol,2005,100(11):25102516.

  23 Taniuchi I, Osatom M, Egawa T, et al. Differential reqirements for Runx proteins in CD4 repression and epigengetic silencing during T lymphocyte development [J]. Cell,2002,111(5):621633.

  24 Fainaru O, Woolf E, Lotem J, et al. Runx3 regulates mouse TGFbetamediated dendritic cell function and its absence results in airway inflammation [J]. EMBO J, 2004,23(4):969979.

  25 Brenner O, Levanon D, Negreanu V, et al. Loss of Runx3 function in leukocytes is associated with spontaneously developed colitis and gastric mucosal hyperplasia [J].Proc Natl Acad Sci USA, 2004,101(45):1601616021.

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