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《外科学其他》

Survivin与Caspase-3在胆管细胞癌中的表达及相关性研究

发表时间:2010-02-05  浏览次数:624次

Survivin与Caspase-3在胆管细胞癌中的表达及相关性研究作者:黄辉,耿小平,熊奇如,等    作者单位:六安市人民医院 肝胆外科,安徽 六安 237005;2.安徽医科大学第一附属医院 普外科,安徽 合肥 230022)     【摘要】  目的 探讨Survivin和Caspase-3在胆管细胞癌中的表达及相互关系。方法 用免疫组化S-P法分别检测Survivin和Caspase-3在胆管细胞癌、癌旁组织及正常胆管组织中的表达。结果 ①Survivin在胆管细胞癌中的表达显著高于癌旁组织和正常胆管组织(P<0.01);Caspase-3在胆管细胞癌中的表达显著低于癌旁组织和正常胆管组织(P<0.01)。②在胆管细胞癌中,Survivin的表达随着肿瘤分化程度的降低而增强(rs=0.404,P<0.01),Caspase-3的表达随着肿瘤分化程度的降低而减弱(rs=-0.389,P<0.05)。③Survivin和Caspase-3在胆管细胞癌中的表达呈负相关(rs=-0.765,P<0.01)。结论 Survivin的高表达和Caspase-3的失表达抑制了胆管细胞癌细胞的凋亡,可能与胆管细胞癌细胞的生长有关;Survivin和Caspase-3表达的负相关性反映了Survivin抑制Caspase-3介导的细胞凋亡,可能与癌细胞的发生发展有密切关系。    【关键词】  胆管肿瘤;Survivin;Caspase-3;免疫组织化学1  资料和方法    1.1  资料  收集安徽医科大学第一附属医院1995年至2004年间诊断明确、资料完整的胆管细胞癌手术标本42例,所有病例术前均未行放、化疗。其中男22例,女20例;年龄25~77岁,平均61.2岁;肿瘤已切除标本为24例,肿瘤未切除切取部分肿瘤组织标本18例。24例肿瘤切除标本中带有癌旁胆管组织者20例,另选择11例正常胆管组织(来源于尸体解剖,肉眼及显微镜下胆管组织无明显病变)作为对照。所有标本均经10%甲醛固定,石蜡包埋,4 ?滋m连续切片,分别作HE及免疫组化染色。HE切片由2位有经验的病理科医生复诊证实。    1.2  实验方法    1.2.1  试剂  浓缩型鼠抗人Survivin单克隆抗体;浓缩型兔抗人Caspase-3多克隆抗体;免疫组化S-P试剂盒(即用型)均购自于北京中山生物技术有限公司。    1.2.2  免疫组化操作  严格按S-P试剂盒说明书进行。    1.3  结果判断  双盲法阅片,Survivin 阳性判断标准:胆管细胞浆或核呈棕黄色细颗粒者;Caspase-3阳性判断标准:胆管细胞浆呈棕黄色颗粒者。采用半定量积分法[4]:每项指标随机选取10个高倍视野,阳性细胞数≤10%为阴性(-);11%~25%为弱阳性(+);26%~50%为中等阳性(++);>50%为强阳性(+++);后三者视为阳性。    1.4  统计学方法  在SPSS12.0统计软件包上完成,采用?字2检验;小样本(n<40)用Fish确切概率法计算概率;两因素及等级资料的相关性用Spearman相关分析。2  结果    2.1  Survivin的表达情况  阳性表达颗粒呈棕黄色,位于胞浆或核内。在胆管细胞癌中阳性表达率显著高于癌旁组织(P<0.01)和正常胆管组织(P<0.01);而正常胆管与癌旁组织阳性表达率差异无统计学意义(P>0.05)。Survivin在胆管细胞癌中的表达随着肿瘤分化程度的降低而增强(rs=0.404,P<0.01)。见图1;表1,2。    2.2  Caspase-3的表达情况  阳性表达亦为棕黄色颗粒,主要为浆型分布,少数为核浆型分布,且个别具有凋亡特征的细胞呈强阳性;癌旁组织和正常胆管组织均为浆型分布。在胆管细胞癌中阳性表达率显著低于癌旁组织(P<0.01)和正常胆管组织(P<0.01);而正常胆管与癌旁组织阳性表达率差异无统计学意义(P>0.05)。Caspase-3在胆管细胞癌中的表达随着肿瘤分化程度的降低而减弱(rs=-0.389,P<0.05)。见图2~4;表1,2。    2.3  Survivin和Caspase-3在胆管细胞癌中表达的相关性  将42例胆管细胞癌中的Survivin和Caspase-3阴性和阳性表达数建立数据库,相关分析得:rs=-0.765,P<0.01,提示二者在胆管细胞癌中表达呈明显的负相关性。见表3。4  讨论     Survivin在多种恶性肿瘤组织中表达上调[5-7],在胆管细胞癌中表达情况的研究报道较少。本研究表明,Survivin在胆管细胞癌中表达上调,推测是由于基因表达的调节功能异常,可能保护癌细胞逃过凋亡关卡(checkpoint),通过有丝分裂促进转化细胞的异常增殖,使癌细胞得以进一步生长。Survivin以细胞周期依赖的形式在G2/M期高表达,可初步认为它的开始表达是胆管细胞癌发生的早期事件,有望成为胆管细胞癌潜在的肿瘤标志物,与有关胰腺癌的研究报道相一致[7]。此外,Survivin在胆管细胞癌中的表达随着肿瘤分化程度的降低而增强,其表达强度明显影响肿瘤的恶性程度及发展趋势,推测Survivin可能抑制胆管细胞癌细胞凋亡而参与其进展与浸润,对其发展和侵袭起重要作用。    Caspase-3是凋亡信号转导通路中重要效应分子[1],在多种凋亡信号刺激下经蛋白水解作用被激活,参与凋亡降解重要底物的剪切,导致细胞凋亡[8]。本研究表明Caspase-3在胆管细胞癌中的表达显著低于正常胆管组织和癌旁组织。在正常胆管组织、癌旁组织中有较强的表达,提示它的大量表达对正常细胞的“正常凋亡”有重要作用;在胆管细胞癌中表达明显降低,推测可能是凋亡抑制因子活性异常升高导致其表达受抑,使癌细胞凋亡发生障碍而得以生长。此外,Caspase-3在胆管细胞癌中阳性表达随着肿瘤分化程度的降低而减弱,推测随着其恶性程度的增高凋亡抑制因子的活性逐渐增强,Caspase-3的表达因此受抑。    Shin等[3]研究表明,Survivin是Caspase-3和Caspase-7的直接抑制剂。作为细胞周期检查和细胞凋亡之间的界面分子,在调节凋亡途径中抑制Caspase-3的活性,阻断各种刺激诱导的凋亡过程[9]。Gulyaeva等[1]进一步研究认为,Caspase-3可能是Survivin发挥凋亡抑制作用的关键环节之一。本实验提示,Survivin与Caspase-3的表达具有明显负相关性。推测Survivin和Caspase-3可能共同参与了胆管细胞癌细胞增殖及凋亡过程的调节;Survivin抑制Caspase-3介导的细胞凋亡,才使二者表达呈负相关,可能对胆管细胞癌发生、发展起着重要作用。    正是由于Survivin仅特异性地表达于肿瘤组织、在成人正常组织中几乎不表达这一特点,已使其成为恶性肿瘤特异性免疫治疗中广泛适用的靶基因[10]。Ferrario等[11]研究提示,靶向Survivin 治疗可以促进癌细胞凋亡并抑制其增殖,且可增加对化疗药物的敏感性。本实验提示,胆管细胞癌组织Survivin表达显著上调,且与Caspase-3的表达呈负相关。据此可设想针对Survivin靶向治疗,如选择其反义核苷酸ECPR-1或构建其RNA干扰(RNAi)质粒载体,降低或封闭Survivin表达,解除Survivin对Caspase-3活性的抑制作用可有效启动癌细胞的凋亡程序,有望成为胆管细胞癌基因治疗的一个有效途径。【参考文献】[1] Gulyaeva NV. Non-apoptotic functions of Caspase-3 in nervous tissue[J]. Biochemistry(Mosc),2003,68(4):1171-1180.[2] Yamashita S, Masuda Y, Kurizaki T,et al. Survivin expression predicts early recurrence in early-stage breast cancer[J]. Anticancer Res,2007,27(9):2803-2808.[3] Shin S, Sung BJ, Cho YS, et al. An anti-apoptotic protein human Survivin is a direct inhibitor of Caspase-3 and -7[J]. Biochemistry,2001,40(4):1117-1123.[4] Khan S A, Tomas H C, Toledano M B, et al. P53 mutations in human cholangiocarcinoma: a review[J]. Liver Int,2005,25(4):704-716.[5] Meng H, Lu C, Mabuchi H, et al. Prognostic significance and different properties of Survivin splicing variants in gastric cancer[J]. Cancer Lett,2004,216(1):147-155.[6] Ponnelle T, Chapusot C, Martin L, et al. Cellular localization of Survivin: impact on the prognosis in colorectal cancer[J]. J Cancer Res Clin Oncol,2005,131(7):504-510.[7] Bhanot U, Heydrich R, Moller P, et al. Survivin expression in pancreatic intraepithelial neoplasia (PanIN): steady increase along the developmental stages of pancreatic ductal adenocarcinoma[J]. Am J Surg Pathol,2006,30(6):754-759.[8] Green D, Kroemer G. The central executioners of apoptosis: caspases or mitochondria?[J]. Trends Cell Biol,1998,8(7):267-271. [9] Deveraux QL, Reed JC. IAP family proteins——suppressors of apoptosis[J]. Genes Dev,1999,13(3):239-252.[10] Shi M, Guo XT, Shu MG, et al. Enhancing tumor radiosensitivity by intracellular delivery of Survivin antagonists[J]. Med Hypotheses,2007,68(3):1056-1058.[11] Ferrario A, Rucker N, Wong S, et al. Survivin, a member of the inhibitor of apoptosis family, is induced by photodynamic therapy and is a taget for improving treatment response[J]. Cancer Res,2007,67(5):4989-4995.

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