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《外科学其他》

α-硫辛酸对大鼠肝缺血再灌注后缺血型胆道病变防治作用的实验研究

发表时间:2009-07-30  浏览次数:631次

 作者:黎一鸣 李华 姜维明    作者单位:西安交通大学医学院第二附属医院 普通外科 (陕西 西安 710004)

 【摘要】  目的:探讨大鼠肝缺血再灌注(ischemia-reperfusion, I/R)后缺血型胆道病变的发生机制及α-硫辛酸(alpha-lipoic acid, α-LA)对其的防治作用。方法:成年健康雄性SD大鼠90只,随机分为正常对照组(N组)、I/R组、α-LA处理组(LA组),建立全肝缺血再灌注损伤(ischemia-reperfusion injury, IRI)模型。检测血清丙氨酸氨基转移酶(ALT)、天冬氨酸氨基转移酶(AST)、γ-谷氨酰转肽酶(γ-glutamyl transferase,GGT)、总胆红素(total bilirubin, TBIL)水平;电子显微镜观察胆小管变化;FITC-Phalloidin显示胆小管F-actin微丝的分布变化,激光共聚焦显微镜采集图像并定量分析。结果:I/R组血清ALT、AST、GGT和TBIL水平与N组相比明显升高(P<0.05),LA组血清ALT、AST、GGT和TBIL水平与I/R组相比明显降低(P<0.05)。F-actin荧光变化和电子显微镜超微结构改变相符,I/R各组F-actin荧光染色紊乱、减弱,强度明显低于N组(P<0.05);胆小管微绒毛大量脱落,管腔扩张。LA组病理改变较轻,F-actin荧光染色减弱,但程度较I/R组轻,荧光紊乱不甚明显,平均荧光强度高于I/R组(P<0.05);胆小管微绒毛部分脱落,管腔扩张亦不明显。结论:肝脏I/R可造成胆小管F-actin微丝破坏、微绒毛丧失,导致胆小管收缩减弱,胆汁排泄功能受损,这可能是大鼠肝脏I/ R后缺血型胆道病变发生的主要机制;α-硫辛酸通过清除氧自由基,降低脂质过氧化反应,调节细胞内氧化剂-抗氧化剂的含量,保护胆小管F-actin微丝结构免遭缺血再灌注损伤破坏,进而预防和治疗缺血型胆道病变。

 【关键词】  α-硫辛酸·再灌注损伤·缺血型胆道病变·肌动蛋白类

   Experimental study on preventive and therapeutic effect of alpha-lipoic acid on ischemic type biliary lesion after ischemia–reperfusion in rat liver

    LI Yi-ming, LI Hua, JIANG Wei-ming

    Department of General Surgery, the Second Affiliated Hospital, Medical School of Xi’an Jiaotong University (Xi’an 710004, China)

    【ABSTRACT】 Objective: To investigate the mechanism of ischemic type biliary lesion after ischemia-reperfusion(I/R)in rat liver and the role of α-lipoic acid in the prevention and treatment. Methods: Ninety Sprague Dawley rats were divided randomly into three groups: normal control (N), ischemia reperfusion (I/R) and alpha-lipoic acid pretreatment (LA) groups. The model of rat hepatic ischemia-reperfusion was established. The activity of serum ALT、AST、γ-GGT and TBIL were measured. The changes of bile canaliculus were observed by transmission electron microscope. The modification of F-actin microfilaments was quantified using FITC-Phalloidin and analysised by confocal laser scanning microscopy (CLSM). Results: The ALT、AST、γ-GGT and TBIL levels of the ischemia reperfusion group was significantly increased (P<0.05), while the alpha-lipoic acid pretreatment group was significantly decreased (P<0.05) compared with the normal control group. Bile canalicular F-actin was destroyed after reperfusion and this modification of F-actin staining was consistent with the observation by transmission electron microscopy. The staining of F-actin in the ischemia reperfusion group was decreased significantly (P<0.05) compared with the normal control group. There was a marked loss of canalicular microvilli and distension of canalicular lumen in the ischemia reperfusion group. The staining of F-actin in the LA group was significantly increased than those in the I/R group (P<0.05). Conclusions: Ischemia reperfusion induces an disruption of bile canalicular F-actin microfilaments and a loss of microvilli. Alpha-lipoic acid can protect bile canalicular F-actin microfilaments against IRI.

    【KEY WORDS】 Alpha-lipoic acid·Reperfusion injury·Ischemic type biliary lesion·Actins

      肝脏缺血再灌注损伤(ischemia-reperfusion injury, IRI)是导致缺血型胆道病变最重要的原因之一[1],其机制尚未完全了解。F-actin微丝沿质膜分布,尤其在胆小管区域,对胆小管收缩引起胆汁排泄起重要作用[2]。α-硫辛酸(alpha-lipoic acid, α-LA)是已知天然抗氧化剂中效果最强的一种,已有国外文献报道,α-硫辛酸在肝IRI中,对肝细胞具有保护作用[3],但α-LA对肝IRI后缺血型胆道病变的防治作用,国内外文献尚未见报道。本研究在大鼠全肝缺血再灌注(ischemia-reperfusion, I/R)模型的基础上,以胆小管F-actin微丝为研究靶点,以α-LA为干预措施,结合血清淤胆指标,研究肝I/R后胆小管F-actin微丝的变化以及α-LA在肝IRI中对胆小管F-actin微丝是否具有保护作用,以期探讨α-LA在预防肝I/R后缺血型胆道病变发生的保护机制,为防治肝I/R后缺血型胆道病变提供理论依据及新的途径,为α-LA应用于临床提供事实及理论依据。

    1 材料与方法

    1.1 实验动物及分组 雄性SD大鼠90只,6~8周龄,体质量200~250 g,西安交通大学医学院实验动物中心提供。90只大鼠随机分成对照组(N组)、I/R组及α-LA处理组(LA组)3组,每组30只,并按I/R不同时相分为I/R 2、6和24 h 3个亚组,每个亚组各10只。

    1.2 主要仪器与设备 异硫氢胍荧光素标记的鬼笔环肽(FITC-Phalloidin)和抗荧光衰减封片剂均购自Alexis公司。透射式电子显微镜(日立HITACHI公司H-600),由西安交通大学医学院电子显微镜中心提供。激光共聚焦显微镜(型号:TCS Sp2)由西安交通大学医学院中心实验室提供。

    1.3 方法 

    1.3.1 动物模型制作及取材 大鼠术前12 h禁食、自由饮水。3%戊巴比妥钠腹腔注射麻醉(30 mg/kg),取上腹正中切口入腹,游离肝蒂,用无创血管夹夹闭,造成100%实质性肝缺血,持续35 min后去除血管夹,形成再灌注。N组仅开腹解剖肝门,不做肝血流阻断及再灌注。LA组于缺血前15 min腹腔注射α-LA,剂量100 mg/kg,α-LA于注射前溶于载体(成分:乙醇35%,聚乙二醇400 35%,0.9%生理盐水30%)。N组和I/R组于相应时相点注入等量空白载体。至预定时相点取材,心脏采血,制备血清。迅速切取肝脏组织,部分低温下细切为1 mm3大小,2.5%戊二醛固定,备电子显微镜标本;部分用冰生理盐水洗去血迹、拭干,快速置入冻存管,于液氮罐冷冻后移入-80 ℃冰箱保存,待F-actin检测;部分置10%甲醛保存。

    1.3.2 检测项目 测定血清丙氨酸氨基转移酶(ALT)、天冬氨酸氨基转移酶(AST)、γ-谷氨酰转肽酶(γ-glutamyl transferase,GGT)和总胆红素(total bilirubin, TBIL)。肝组织石蜡标本HE染色,光学显微镜下观察肝组织病理改变;透射电子显微镜观察胆小管超微结构改变。F-actin检测[4]:1)将- 80 ℃冰箱保存的肝脏组织于低温切片机(- 28 ℃)下切成8 μm厚的冷冻切片。2)PBS简单冲洗、晾干,用3.7%的多聚甲醛于室温下固定10 min,PBS洗3次。3)滴加FITC-Phalloidin染色液(甲醇溶解,PBS稀释至10 μg/mL),室温孵化1 h,PBS冲洗3次,每次15 min,洗去多余荧光;以上步骤避光操作。4)抗荧光衰减封片剂封片。5)于激光共聚焦显微镜下观察并采集图像,测定胆小管膜平均特异荧光强度。

    1.4 统计学处理 采用SPSS13.0统计软件包进行分析,实验数据用x±s表示,各组间比较用方差分析、Dunnett-t检验,组间方差不齐时采用非参数秩和检验。P≤0.05为差异有统计学意义。

    2 结果

    2.1 血清ALT、AST、GGT和TBIL水平的变化 血清ALT、AST水平,I/R各组明显升高,再灌注6 h时达最高,随后下降,与相应时相点N组比较差异均有统计学意义(P<0.05);LA组和I/R组比较明显下降,二者差异有统计学意义(P<0.05),但仍高于N组(P<0.05,表1)

    血清GGT、TBIL水平,I/R各组明显升高,均呈持续升高趋势,和相应时相点N组比较差异均有统计学意义(P<0.05)。LA各组与相应时相点I/R组比较均明显下降(P<0.05),但仍高于N组(P<0.05,见表1)

    2.2 光学显微镜下肝组织病理改变 N组肝组织形态无明显变化,为正常肝组织形态学表现。肝小叶组织结构完整,肝细胞板以中央静脉为中心向四周呈放射状排列。肝细胞胞质嗜酸红染,细胞核大、形圆,位于细胞中央,核膜清晰完整,核仁明显。I/R组肝组织轻度炎性反应,再灌注后6 h最严重,肝小叶结构基本正常,小叶间动、静脉结构正常,出现中央静脉与肝窦充血,部分肝窦内皮细胞脱落,肝索无崩解。肝细胞明显水肿,胞质疏松、气球样变,可见少许肝细胞坏死,肝小叶内有中等量中性粒细胞浸润。LA组偶见散点状坏死,也见肝细胞肿胀、空泡变性,但细胞完整清晰,其程度、范围均较I/R组轻。

    2.3 透射电子显微镜下各组胆小管的改变 电子显微镜下可见N组正常大鼠胆小管横切面的形态外观,管腔面微绒毛丰富,肌动蛋白微丝形成的微绒毛核心清晰可见,胆小管周围的肝细胞膜形成紧密连接、桥粒等连接复合体封闭胆小管(图1 A)。I/R组多数肝细胞肿胀,细胞核形状不规则,核内染色质呈团块状凝集、边集,细胞质内线粒体明显肿胀,体积增大,数量增多,线粒体嵴溶解、消失呈均质状,粗面内质网略有扩张,数量减少,偶见凋亡的肝细胞及凋亡小体,胆小管形态明显改变,管腔扩张,腔面微绒毛脱落、减少,腔内可见胆汁淤积,其连接结构不清晰(图1 B)。LA组肝细胞基本正常,结构不如N组清晰,细胞核基本呈圆形,核内染色质轻度凝集,细胞质内细胞器丰富,线粒体轻度肿胀,粗面内质网呈层状分布,附着的核糖体可见,细胞质内还可见到少量脂滴,胆小管细长,管腔扩张不明显,腔面微绒毛丰富,腔内未见胆汁淤积,其紧密连接结构基本清晰(图1 C)。

    2.4 F-actin的分布变化 N组可见F-actin的荧光染色沿肝细胞基底膜和胆小管膜分布,F-actin在胆小管横切面呈明亮的小点状荧光,N组各亚组无明显差异(图2 A)。I/R组中2、6及24 h亚组,F-actin的荧光染色均明显减弱,可见肝细胞基底膜的荧光紊乱,胆小管膜的荧光强度也大大减弱,代表胆小管F-actin的小点状荧光减少、甚至消失(图2 B)。LA组中2h、6h及24h亚组,F-actin荧光染色减弱,但程度较I/R组轻;肝细胞基底膜的荧光紊乱不甚明显,代表胆小管F-actin的小点状荧光仍然可见(图2 C)。

    2.5 胆小管膜F-actin的定量分析 各组胆小管膜F-actin的平均荧光强度见表2,I/R组中2、6和24  h亚组胆小管膜F-actin的平均荧光强度明显减弱,和相应时相点N组比较均有显著性差异(P<0.05)。 LA各组和相应时相点I/R亚组比较,平均荧光强度高于I/R组,二者差异有统计学意义(P<0.05),但仍低于N组(P<0.05)。

    3 讨论

    由于外科技术的不断提高,非外科技术原因的移植肝缺血型胆道病变(ischemic type biliary lesion,ITBL)成为肝移植术后胆道并发症的主要类型,发生率为2%~19%[5]。ITBL主要表现为肝移植术后移植肝非吻合性的移植肝胆管树的破坏,胆道的狭窄、胆泥形成,甚至胆道毁损和移植物丢失。IRI是导致ITBL最重要的原因之一[1]。因此从临床角度出发,研究肝脏I/R后ITBL发生的机制及α-LA的保护作用具有重要的理论意义。

    胆汁在肝内的排泄依赖于胆小管的收缩,胆小管是胆汁排泄的最小管道,对胆汁的排泄起重要作用[6]。位于汇管区周围的胆小管连续、有力、单向的收缩运动,可有效地将胆汁推向肝门部的胆管[7]。胆小管结构的存在和功能的维持依赖于肝细胞骨架的完整。细胞骨架的主要成分为微丝,微丝的基础蛋白是肌动蛋白(actin),actin在细胞内以聚合态F-actin和游离态G-actin2种形式存在[7]。正常情况下细胞内的2种actin处于聚合/解聚的动态平衡中,2者之间的转化受多种因素影响。当受到一定的刺激后,细胞内游离的G-actin彼此结合形成F-actin,进而通过自身螺旋组装形成微丝,此过程即细胞骨架重排[8]。F-actin能改变其空间结构,完成特定功能,所以能较好地反映细胞骨架的变化。F-actin沿质膜分布,尤其在胆小管区域,在胆小管收缩引起的胆汁排泄中起重要的作用。胆小管微绒毛包含有许多F-actin微丝束,这些微丝从质膜延伸至管腔共同构成胆小管微绒毛的内芯。研究表明,F-actin微丝连续地聚合与解聚作用实现胆小管的收缩,进而促进胆汁排泄[2]。改变F-actin微丝结构,将破坏胆小管收缩,从而导致胆汁淤积[9]。

    本研究显示,血清ALT、AST水平,于再灌注6 h组达最高,随后下降;与此相反,血清GGT和TBIL水平各组间呈持续升高趋势。这说明肝脏经历轻度热IRI后,肝细胞发生可逆性损伤,并出现胆汁淤积;随着受损肝细胞的逐渐恢复,胆汁淤积仍然存在。荧光变化和超微结构改变相符,再灌注2~24 h,F-actin荧光染色紊乱、减弱,强度明显低于对照组,胆小管微绒毛大量脱落,其结果与再灌注后血清GGT和TBIL的异常改变相一致。这充分说明鼠肝I/R后F-actin微丝破坏、细胞骨架崩解导致胆小管收缩功能受损,胆汁排泄障碍,从而导致ITBL。文献报道,F-actin微丝于再灌注之后的这种损伤性改变可能是活性氧(ROS)、细胞钙超载和ATP耗竭共同作用对其破坏的结果[10]。

   α-LA是具有水溶与脂溶双重特性的一种抗氧化剂,可以进入细胞的脂相和水相部分,可以在任何部位清除自由基,发挥“全能抗氧化剂”的作用,是整个抗氧化防御网络中最多能、最强有力的抗氧化剂。α-LA对I/R组织的保护作用可能主要是因为其抗氧化作用。Sundaram等[11]在用α-LA对老年大鼠进行研究时发现,LA可通过抗氧化作用减少氧化剂的生成、脂质过氧化、蛋白羟基化和DNA链的断裂。同样,LA能通过增强对氧自由基的清除,对肝IRI起着良好的抗脂质过氧化作用[3]。

    本研究中,肝脏I/R后,血清氨基转移酶和淤胆指标升高,胆小管管腔扩张,腔面微绒毛减少、脱落,腔内淤胆,紧密连接结构不清晰,荧光染色可见肝细胞基底膜的荧光紊乱,代表胆小管F-actin的小点状荧光减少、甚至消失。α-LA预处理可明显改善这种损伤。在LA组,相应的血清学指标ALT、AST、GGT、TBIL明显降低;电子显微镜下可见胆小管细长,管腔扩张不明显,腔面微绒毛丰富,腔内未见胆汁淤积,紧密连接结构基本清晰;荧光染色肝细胞基底膜的荧光紊乱不甚明显,代表胆小管F-actin的小点状荧光仍然可见,平均荧光强度高于I/R组。α-LA对F-actin微丝保护的机制可能与下列因素有关:1)清除氧自由基,抗脂质过氧化作用。氧自由基可以直接或间接破坏F-actin微丝,α-LA能通过增强氧自由基的清除,再生细胞内其他抗氧化剂,减轻氧自由基介导的F-actin微丝结构和功能的损害, 从而实现其在肝脏I/R中对F-actin的保护作用。2)减少肝细胞ATP分解,增加ATP生成,延缓ATP耗竭。ATP的耗竭使F-actin断裂从而引起细胞骨架的破坏。α-LA可增加肝细胞ATP生成,以加强肝细胞能量储备,对肝细胞高能磷酸化合物具有明显保护作用。3)减轻钙超载。肝脏IRI使细胞内外钙的动态平衡紊乱,细胞发生钙超载,细胞内Ca2+浓度增高可激活Ca2+依赖性蛋白酶破坏actin细胞骨架。α-LA通过强大的氧自由基清除作用,减轻线粒体及肌浆网膜损伤,增加ATP含量,提高Na+/K+-ATP酶活性和肌浆网对Ca2+的摄取能力,减轻钙超载而间接的保护F-actin,免受IRI。

   综上所述,肝IRI是肝移植术后发生ITBL的重要原因之一。IRI可造成胆小管F-actin微丝破坏、微绒毛消失,导致胆小管收缩减弱,胆汁排泄功能受损,这可能是大鼠肝I/R后缺血型胆道病变发生的主要机制。α-LA能够通过减少氧自由基的生成,降低脂质过氧化反应,调节细胞内氧化剂-抗氧化剂的含量,减少炎症介质的释放,提高ATP含量等作用,有效地减轻肝I/R对胆小管的损伤。由于肝IRI机制复杂,造成I/R后ITBL的因素众多,故对于α-LA抗肝IRI的作用、α-LA对胆小管F-actin保护作用及肝I/R引起的ITBL防治作用的主要分子机制应进一步研究和探讨。

【参考文献】  [1] 裴红红,黎一鸣,柏玲,等.肝移植术后缺血型胆管病变[J].基层医学论坛,2007,11(10):922-923.

[2] Tsukada N, Ackerley CA, Phillips MJ, et al .The structure and organization of the bile canalicular cytoskeleton with special reference to actin and actin-binding proteins[J]. Hepatology, 1995,21(4):1106-1113.

[3] Dulundu E, Ozel Y, Topaloglu U, et al. Alpha-lipoic acid protects against hepatic ischemia-reperfusion injury in rats[J]. Pharmacology, 2007,79 (3):163-170

[4] Benkoel L, Dodero F, Hardwigsen J, et al. Effect of ischemia-reperfusion on bile canalicular F-actin microfilaments in hepatocytes of human liver allograft: image analysis by confocal laser scanning microscopy[J]. Dig Dis Sci, 2001,46(8):1663-1667.

[5] Abou-Rebyeh H, Veltzke-Schlieker W, Radke C,et al Complete bile ducts equestration after liver transplantation,caused by Ischemic-Type Biliary Lesions[J]. Endoscopy, 2003,35(7):616-620.

[6] LeCluyse EL, Fix JA, Audus KL, et al. Regeneration and maintenance of bile canalicular networks in collagen-sandwiched hepatocytes[J]. Toxicol In Vitro, 2000,14(2):117-132.

[7] Watanabe N, Tsukada N, Smith CR, et al. Motility of bile canaliculi in the living animal: implications for bile flow[J]. J Cell Biol, 1991,113(5):1069-1080.

[8] Akisaka T, Yoshida H, Inoue S, et al. Organization of cytoskeletal F-actin, G-actin, and gelsolin in the adhesion structures in cultured osteoclast[J]. J Bone Miner Res, 2001,16(7):1248-1255.

[9] Benkoe¨l L CF, Dodero F, et al. Effect of dietary lipids (soybean lecithin and triacylglycerol) on hepatic F-actin microfilaments in cyclosporine A-treated rats. Image analysis by confocal laser scanning microscopy[J]. Dig Dis Sci, 2000,45(6):1096-1102.

[10] Nieuwenhuijs VB DBM, De Bruijn MT, Padbury RT, et al. Hepatic ischemia-reperfusion injury: roles of Ca2+ and other intracellular mediators of impaired bile flow and hepatocyte damage[J]. Dig Dis Sci, 2006,51(6):1087-1102.

[11] Sundaram K, Panneerselvam KS. Oxidative stress and DNA single strand breaks in skeletal muscle of aged rats: role of carnitine and lipoicacid[J]. Biogerontology, 2006,7(2):111-118.

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