颞叶癫(疒间)海马神经元凋亡机制的研究进展
发表时间:2011-10-27 浏览次数:539次
作者:卢峰
【摘要】 颞叶癫(疒间)的海马病理变化分子机制一直是神经学科研究的重点。在发现海马致(疒间)灶中存在天冬氨酸特异性半胱氨酸蛋白酶3 (caspases-3) 后,学者们推测凋亡机制可能对颞叶癫(疒间)海马病理的形成具有一定作用。近年来,许多学者建立了相应的实验模型或活体标本,以凋亡基础理论为依据,从不同角度对颞叶癫(疒间)中海马神经元损伤的凋亡机制进行研究,相继发现了凋亡级联效应途径中其他分子的显著表达,包括死亡受体、凋亡效应酶、凋亡调节蛋白等,甚至在基因水平找到了凋亡存在的证据,同时也引发了抗凋亡的治疗研究,为颞叶癫(疒间)海马神经元损伤分子机制的进一步研究及颞叶癫(疒间)的药物治疗研究提供了理论基础。本文对此进行综述。
【关键词】 癫(疒间),颞叶; 海马; 神经元; 细胞凋亡
颞叶内侧癫(疒间) (MTLE) 是指颞叶内侧海马病变导致的癫(疒间),临床主要表现为复杂部分性发作,病理以海马硬化为典型特征。动物实验证明:短暂或持续的癫(疒间)发作可导致脑内神经元凋亡和多种凋亡相关基因的表达,如凋亡调节蛋白、天冬氨酸特异性半胱氨酸蛋白酶 (caspases) 家族成员等[1],其中caspase-3是细胞凋亡信号转导通路的关键效应酶,caspase-8和 caspase-9启动的内外源性凋亡途径均与之密切相关。caspase-3在神经系统轴突的引导、突触的可塑性、神经保护及缺血耐受等方面均可发挥重要作用[2],故单一caspase-3指标的检测不能证实凋亡途径的存在。Uysal等[3]采用dUTP缺口末端标记技术 (TUNEL) 检测,没有在颞叶癫(疒间)病人切除标本中发现断裂的DNA片断,因此,凋亡机制在颞叶癫(疒间)海马神经元中是否存在尚有疑问。为此,研究者们以凋亡基础理论为依据,进行了包括死亡受体、凋亡效应酶、凋亡调节蛋白等凋亡途径中其他相关分子的研究,甚至在基因水平找到了凋亡存在的依据,从不同方面证实了凋亡机制在颞叶癫(疒间)海马神经元中的存在。
1 凋亡机制的分类
凋亡途径主要分为死亡受体途径 (内源性途径) 和线粒体途径 (外源性途径)。细胞色素C (CytC) 释放是线粒体参与细胞凋亡外源性途径的主要分子,CytC一旦释放,即与细胞凋亡蛋白酶活化因子-1 (apoptotic protease activating factor-1,Apaf-1) 结合,在dATP/ATP存在条件下形成多蛋白复合物,即凋亡体,继而活化caspase-9,后者再激活下游效应caspase (包括caspase-3、caspase-6或caspase-7等),效应caspase诱导细胞凋亡[4]。内源性凋亡途径的主要通路有:①Fas/FasL信号途径。FasL为同源三聚体,可与细胞膜上3个Fas分子结合,并通过其胞内域与细胞质中的Fas死亡结构域相关蛋白 (Fas associated death domain,FADD ) 的DD结合,继而通过FADD末端死亡效应结构域 (death effector domain,DED) 与邻近caspase-8中的DED结合,使caspase-8寡聚化,自身裂解而活化caspase-8,最终激活下游caspase-3,导致细胞凋亡。②肿瘤坏死因子受体1 (TNFR-1) 信号途径。TNF与TNFR-1结合,三聚体化的TNFR-1通过DD与TNFR-1相关蛋白 (TNFR-1-associated death domain,TRADD) 结合,TRADD的DD再与FADD结合,下传凋亡信号,活化caspase-8,然后激活下游的caspase-3,导致细胞凋亡[5-6]。同时活化的caspase-8能够裂解Bid蛋白,从而导致CytC的释放,caspase-8是连接内外源途径的桥梁。③颗粒酶B途径。该途径较少见。颗粒酶B直接剪切并活化caspase-3,后者作用于细胞内底物而介导凋亡,或该酶剪切Bid而产生tBid,后者于Bax转位于线粒体,介导CytC释放,激活caspase级联反应。
因此,凋亡是多种分子的级联反应,这些分子是凋亡途径中不可缺少的,它们的异常表达介导了凋亡的发生,在病灶形成中具有重要意义。该理论为颞叶癫(疒间)凋亡机制的研究及抗凋亡作用的研究提供了基础理论依据。
2 凋亡相关分子的最新研究
2.1 凋亡受体的研究 Tan等[7]通过对癫(疒间)点燃模型的研究,发现海马病灶中的fas免疫反应明显增强,并通过TUNEL染色证实了fas诱导与细胞凋亡有关。尚伟等[8]在颞叶癫(疒间)海马活体标本中,用免疫组化法检测到fas蛋白的显著表达,而在因颞叶脑血管畸形而切除前颞叶的标本中没有发现fas表达,同时在电镜下观察到癫(疒间)组标本具有早期凋亡征象的神经元。凋亡的发生也可由细胞表面表达的死亡受体激发,如TNFR-1,死亡受体在癫(疒间)发作后迅速聚集,并招募接头蛋白FADD和起始caspase[9-10],启动下级效应。Yamamoto等[11]对颞叶癫(疒间)病人的海马手术标本与尸体解剖标本进行了对照研究,采用Western-Blotting法发现:癫(疒间)组病人的TRADD、启动caspase-8、ASK1含量明显高于对照组;对细胞的亚分区研究发现:在细胞质中,肿瘤坏死因子受体1、TRADD、FADD明显升高,微粒体中TRADD、启动caspase-8明显升高;应用免疫沉淀可以检测测到TRADD-FADD结合分子;荧光显微镜检查可见TRADD与FADD连接。该结果说明:在TNFR-1、fas介导的凋亡信号传导通路中,这些分子的表达是必不可少的;并提示了病灶中正在发生的凋亡现象,从而从死亡受体水平进一步证明了凋亡是颞叶癫(疒间)海马神经元损伤的机制之一。
2.2 凋亡效应酶的研究 脱氧核糖核酸链片断化通常被认为是癫(疒间)发作诱导细胞死亡的生物化学特征[12]。凋亡细胞中的末期DNA链断裂是由一些核酸酶介导的,包括caspase激活的脱氧核糖核酸酶 (caspase-activated DNase,CAD)、凋亡诱导因子(apoptosis-inducing factor,AIF) 和核酸内切酶G (endonuclease G,Endo G)。CAD由caspase激活,可进入细胞核内,致DNA片断化;AIF、Endo G均由线粒体释放,以非caspase依赖性方式介导染色质浓集及DNA片断化。王焕明等[13]对颞叶癫(疒间)病人活体标本及非颞叶癫(疒间)病人尸解标本进行对比研究,同样观察到颞叶癫(疒间)病人海马CA3区末端标记阳性细胞平均百分率显著性增高,说明DNA裂解片段增多,提示细胞中存在效应酶介导的DNA裂解过程。Schindler等[14]对颞叶癫(疒间)与非癫(疒间)病人的海马标本进行对比,发现海马中这些效应酶呈亚细胞分布,细胞核内CAD显著表达;同时用半定量免疫组化分析法在病人标本中发现了裂解的caspase-3阳性细胞,而对照组呈阴性。 颞叶癫(疒间)病人线粒体中的AIF、Endo G含量也显著性高于对照组,且仅在裂解caspase-3阳性细胞的细胞核内检测出AIF的存在,在病人的细胞核中并没有发现Endo G蓄积。这些材料从直接导致DNA断裂的酶水平充分证明了正在发生的凋亡,同时也提示,可将干预凋亡发生作为癫(疒间)治疗的一个手段。
2.3 凋亡调节蛋白的研究 最早对凋亡调节蛋白的研究是对Bcl-2家族分子的研究。Bax是一种重要的促细胞凋亡分子,它可以结合成同源二聚体,作为线粒体膜上离子通道的组成成分,使CytC穿过线粒体膜,导致线粒体依赖型凋亡的发生[15]。Bcl-2则可与Bax竞争结合,形成异源二聚体,封闭Bax形成的通道,防止CytC释放,从而抵抗细胞凋亡[16]。庞琦等[17]研究了24例难治性颞叶癫(疒间)病人的海马前部组织,并与6例颞叶前部脑血管畸形病人进行对比,通过免疫组化方法发现了Bcl-2蛋白的差异性表达,同时通过电镜在颞叶癫(疒间)海马标本中观察到了凋亡细胞。Akcali等[18]在动物实验模型海马中检测到了Bax蛋白的表达,同时也在CA1区检测到Bcl-2蛋白含量增加,提示在颞叶癫(疒间)病人中存在凋亡调节蛋白异常表达。P53可以通过诱导氧化还原相关基因表达产生活性氧,促进细胞凋亡,也可以作用于DR5,通过caspase介导的蛋白水解作用导致细胞凋亡。在动物实验模型中已经证实:癫(疒间)发作可以诱导p53基因的表达[19]。
Bcl-2家族成员主要是外源性凋亡途径的调节分子,近年来, Henshall等[20]采用活体标本对照实验研究,发现了另外一种调节蛋白DAP激酶——DAP与FADD结合物的存在,提示DAP激酶可能通过作用于FADD调节凋亡的发生;同时通过共免疫沉淀分析,发现DAP激酶与DIP-1是联合表达的。作者第1次提出DAP激酶、DIP-1在颞叶癫(疒间)病人海马病灶中存在表达,且在内源性神经元凋亡途径中具有调节蛋白的作用;这种结合物在动物实验中也得到了证实[21]。
3 凋亡基因水平的研究
一些学者甚至在基因水平找到了颞叶癫(疒间)海马损伤神经元存在凋亡机制的证据,如Akcali等[18]在颞叶癫(疒间)动物模型海马CA1区检测到编码Bax、Bcl-2蛋白的mRNA呈异常表达;Lee等[22]在红藻氨酸盐诱导的癫(疒间)模型海马神经元中发现了早期即刻基因的大量表达,如 c-Jun、c-fos,并通过免疫组化定量分析,及用TUNEL检测细胞凋亡,证实早期即刻基因的表达与凋亡细胞数目呈正相关;赵瑞等[23]在国内首次构建了癫(疒间)模型大鼠海马凋亡神经细胞最多时 (即发作终止后72 h) 的海马神经元细胞cDNA文库,其文库中包含了癫(疒间)所致凋亡神经细胞的大量蛋白信息。以caspase-3诱饵蛋白载体pBridge-P17mP12对癫(疒间)模型大鼠海马组织的cDNA文库进行筛选,通过3个酵母基因HIS、ADE、LacZ的检测,并借助DNA测序分析,得到阳性克隆MIZ1 (Msx2相互作用锌指蛋白),该蛋白含有3个被caspase-3识别并酶切的四肽结构,说明MIZ1是caspase-3新的酶切底物,从而在基因水平说明了凋亡在颞叶癫(疒间)海马神经元死亡中的重要作用。
4 凋亡机制研究引发的抗凋亡治疗研究
新近的动物实验治疗研究表明:抽搐诱导的神经元丢失可以直接导致癫(疒间)的发生[24],促使癫(疒间)症状加重[21];凋亡对神经元丢失起到了不可或缺的作用,抗凋亡可能是治疗颞叶癫(疒间)一种新的发展方向。2004年,徐元等[25]采用戊四氮致(疒间)模型,在大鼠癫(疒间)发作后连续给予80 mg•kg-1•d-1和40 mg•kg-1•d-1托吡酯,并将未使用托吡酯的癫(疒间)大鼠作为对照,通过TUNEL方法标记DNA断裂片段,原位检测海马CA1和CA3区的神经元,结果显示:80 mg组海马受损神经元明显减少,而40 mg组与对照组差异无统计学意义;说明托吡酯对癫(疒间)发作后的神经元凋亡具有一定保护作用。Gober等[26]对致(疒间)动物模型的海马细胞进行培养,研究人合胞病毒Ⅱ分泌的抗凋亡蛋白ICP10PK的作用机制,应用含有蛋白ICP10PK的无毒性病毒体DeltaRR和ICP10PK敲除的DeltaPK病毒体分别感染培养中的神经元细胞,结果发现:携带蛋白ICP10PK的DeltaRR能抑制caspase-3的活性作用,减少神经元细胞发生凋亡。Manno等[27]发现:在癫(疒间)模型动物海马内注射肉毒杆菌神经毒素E能阻止神经元丢失,其机制是下调了磷酸化c-Jun蛋白和caspase-3裂解片段的浓度,从而得出结论,即在海马区注射肉毒杆菌神经毒素E可以阻止海马神经元的凋亡级联反应。Chuang等[28]将颞叶癫(疒间)大鼠模型海马区CA3区神经元细胞为研究对象,探讨一氧化氮合酶Ⅱ (NOSⅡ) 的促凋亡作用,研究结果显示:NOSⅡ、CytC、启动caspase-3、DNA裂解片段逐步表达并呈相关性,未检测到NOSⅠ、NOSⅢ;应用NOSⅡ抑制剂进行进一步研究,可以检测到CytC、启动caspase-3、DNA裂解片段减少,而NOSⅠ、NOSⅢ抑制剂均未起效。该结果充分说明:NOSⅡ抑制剂可以扭转凋亡发生。
在以上动物实验中,抗凋亡物质的作用机制均为对凋亡分子或凋亡调节蛋白起作用,提示以凋亡途径相关分子为靶点的抗凋亡药物研究是可行的。
5 小结及展望
总之,颞叶癫(疒间)海马神经元中存在癫(疒间)发作-死亡受体表达-效应酶介导凋亡,以及凋亡调节蛋白调节海马神经元死亡的凋亡机制;其可能与颞叶癫(疒间)海马病理变化乃至癫(疒间)病情加重有关。大量的分子生物学研究已为癫(疒间)药物研究提供了前景,并为抗癫(疒间)治疗研究点燃了希望。但研究仍仅限于动物实验,尚未发现针对活体标本的凋亡外源途径研究,且各种途径间的相互联系以及凋亡与癫(疒间)的发作类型、频率、病程长短的关系等亦无报道;此外,在动物实验中发现了细胞坏死现象的存在,其与凋亡的关系尚不明确。这些问题均有待进一步研究,抗凋亡治疗应用于临床,仍有很长的路要走。
【参考文献】
[1] BENGZON J, MOHAPEL P, EKDAHL C T, et a1.Neuronal apoptosis after brief and prolonged seizures [J]. Prog Brain Res, 2002, 135: 111-119.
[2] MCLAUGHLIN B. The kinder side of killer proteases: caspase activation contributes to neuroprotection and CNS remodeling [J]. Apoptosis, 2004, 9(2): 111-121.
[3] UYSAL H, CEVIK I U, SOYLEMEZOGLU F, et al. Is the cell death in mesial temporal sclerosis apoptotic [J]? Epilepsia, 2003, 44(6): 778-784.
[4] LI P, NIJHAWAN D, BUDIHARDJO I, et a1. Cytochrome c and dATP-dependent formation of Apaf-1/caspase-9 com- plex initiates an apoptotic protease cascade [J]. Cell, 1997, 91(4): 479-489.
[5] BUDIHARDJO I, OLIVER H, LATTER M, et a1. Biochemical pathways of caspase activation during apoptosis [J]. Annu Rev Cell Del Bio, 1999, 15: 269-290.
[6] ASHKENAZI A, DIXIT V M. Death receptors: signaling and modulation [J]. Science, 1998, 281(5381): 1305-1308.
[7] TAN Z, LEVID J, SCHREIBER S S, et al. Increased expression of Fas (CD95/APO-1) in adult rat brain after kainite-induced seizures [J]. Neuroreport, 2001, 12(9): 1979-1982.
[8] 尚伟, 毕建忠, 刘伟红, 等. 颞叶癫(疒间)病灶内bax、fas、caspase-3蛋白的表达 [J]. 临床与实验病理学杂志, 2005, 20(4): 411- 413.
[9] SHINODA S, SKRADSKI S L, ARAKI T, et al. Formation of a tumour necrosis factor receptor 1 molecular scaffolding complex and activation of apoptosis signal-regulating kinase 1 during seizure-induce neuronal death [J]. Eur J Neurosci, 2003, 17(10): 2065-2076.
[10] HENSHALL D C, ARAKI T, SCHINDLER C K, et al. Expression of death-associated protein kinase and recruitment to the tumor necrosis factor signaling pathway following brief seizures [J]. J Neurochem, 2003, 86(5): 1260-1270.
[11] YAMAMOTO A, SCHINDLER C K, MURPHY B M, et al. Evidence of tumor necrosis factor receptor 1 signaling in human temporal lobe epilepsy [J]. Exp Neurol, 2006, 202(2): 410-420.
[12] HENSHALL D C, SIMON R P. Epilepsy and apoptosis pathways [J]. J Cereb Blood Flow Metab, 2005, 25(12): 1557- 1572.
[13] 王焕明, 谭启富, 吴波, 等. 颞叶癫(疒间)患者脑内细胞凋亡现象的研究 [J]. 中华神经外科杂志, 1999, 15(6): 333-335.
[14] SCHINDLER C K, PEARSON E G, BONNER H P, et al. Caspase-3 cleavage and nuclear localization of caspase-activated DNase in human temporal lobe epilepsy [J]. J Cereb Blood Flow Metab, 2006, 26(4): 583-589.
[15] NIQUET J, WASTERLAIN C G. Bim, Bad, and Bax: a deadly combination in epileptic seizures [J]. J Clin Invest, 2004, 113(7): 960-962.
[16] MIKHAILOV V, MIKHAILOVA M, PULKRABEK D J, et al. Bcl-2 prevents bax oligomerization in the mitochondrial outer membrane [J]. J Biol Chem, 2001, 276(21): 18361- 18374.
[17] 庞琦, 尚伟, 贺红卫, 等. Bcl-2、fas蛋白在颞叶癫(疒间)病灶内的表达与神经元凋亡 [J]. 中华神经外科杂志, 2005, 21(10): 603-632.
[18] AKCALI K C, SAHINER M, SAHINER T. The role of bcl-2 family of genes during kindling [J]. Epilepsia, 2005, 46(2): 217-223.
[19] TAN Z, SANKAR R, TU W, et al. Immunohistochemical study of p53-associated proteins in rat brain following lithium-pilocarpine status epilepticus [J]. Brain Res, 2002, 929(1): 129-138.
[20] HENSHALL D C, SCHINDLER C K, SO N K, et a1.Death-associated protein kinase expression in human temporal lobe epilepsy [J]. ANN Neurol, 2004, 55(4): 485-494.
[21] ZHANG X, CUI S S, WALLACE A E, et al. Relations be- tween brain pathology and temporal lobe epilepsy [J]. J Neurosci, 2002, 22(14): 6052-6061.
[22] LEE M C, RHO J L, KIM M K. et al. c-JUN expression and apoptotic cell death in kainate-induced temporal lobe epilepsy [J]. J Korean Med Sci, 2001, 16(5): 649-656.
[23] 赵瑞, 刘建民, 赵文元, 等. caspase-3在颞叶癫(疒间)大鼠海马神经凋亡中作用的实验研究 [J]. 中国神经免疫学和神经病学杂志, 2006, 13(1): 38-42.
[24] SAYIN U, OSTING S, HAGEN J, et al. Spontaneous seizures and loss of axo-axonic and axo-somatic inhibition induced by repeated brief seizures in kindled rats [J]. J Neurosci, 2003, 23(7): 2759-2768.
[25] 徐元, 包仕尧, 李文, 等. 托吡酯对癫(疒间)大鼠海马神经细胞凋亡的保护作用 [J]. 神经疾病与精神卫生, 2004, 4(4): 256- 258.
[26] GOBER M D, LAING J M, THOMPSON S M, et al. The growth compromised HSV-2 mutant DeltaRR prevents kainic acid-induced apoptosis and loss of function in organotypic hippocampal cultures [J]. Brain Res, 2006, 1119(1): 26-39.
[27] MANNO I, ANTONUCCI F, CALEO M, et al. BoNT/E prevents seizure-induced activation of caspase-3 in the rat hippocampus [J]. Neuroreport, 2007, 18(4): 373-376.
[28] CHUANG Y C, CHEN S D, LIN T K, et al. Upregulation of nitric oxide synthaseⅡcontributes to apoptotic cell death in the hippocampal CA3 subfield via a cytochrome c/caspas-3 signaling cascade following induction of experimental temporal lobe status epilepticus in the rat [J]. Neuropharmacology, 2007, 52(5): 1263-1273