当前位置:首页 > 文献频道 > 临床内科学 > 文献详细

《神经内科》

定向基因传递载体pET15bZVP1的构建

发表时间:2010-05-24  浏览次数:385次

  作者:折潇,屈秋民,翟海燕 作者单位:(西安交通大学医学院第一附属医院神经内科,陕西西安 710061)

  【摘要】 目的 在JCV VP1氨基末端插入SPA的IgG结合区(Z区),构建原核表达质粒pET15bZVP1。方法 PCR扩增JCV基因组VP1和SPA基因的Z片段;重组PCR连接Z片段和VP1;BamHⅠ和NcoⅠ双酶切将ZVP1片段插入原核表达质粒pET15b。结果 经PCR扩增和琼脂糖凝胶电泳纯化,分别得到VP1和Z片段;再用重组PCR将Z片段和VP1连接成ZVP1重组基因;双酶切将ZVP1插入pET15b的BamHⅠ和NcoⅠ两个酶切位点之间,并经酶切鉴定和DNA测序证实。Western blotting证明pET15bZVP1在体外表达重组蛋白VP1Z。结论 成功在VP1氨基末端插入Z区,构建了原核表达质粒pET15bZVP1,并体外表达重组蛋白VP1Z。

  【关键词】 基因治疗;定向基因传递;JC病毒

  Construction of pET15bZVP1 vector for targeting gene deliveryZHE Xiao, QU Qiumin, ZHAI Haiyan

  (Department of Neurology, the First Affiliated Hospital,

  Medical School of Xian Jiaotong University, Xian 710061, China)ABSTRACT:Objective To construct the vector pET15bZVP1 by inserting the Z fragment into aminoterminal of JCV VP1. Methods The VP1 and Z fragment were amplified by PCR from plasmid pET15b and pEZZ18 respectively, and then they were linked by recombinant PCR. The ZVP1 fragment was inserted into plasmid pET15b by restriction enzyme BamHⅠ and NcoⅠ. Results The VP1 and Z fragment were obtained by PCR and gel purification. The ZVP1 fragment, which was linked by recombinant PCR from VP1 and Z fragment, was inserted into plasmid pET15b between BamHⅠ and NcoⅠ sites, and confirmed by enzyme digestion and DNA sequencing. The expression of VP1Z was confirmed by Western blotting. Conclusion The plasmid pET15bZVP1 has been constructed successfully by inserting Z fragment into aminoterminal of VP1.

  KEY WORDS: gene therapy; targeted gene delivery; JC virus

  随着人口老龄化的迅速发展,许多中枢神经系统疾病将会严重威胁人们的健康。对于这些疾病至今仍缺少有效的治疗方法,基因治疗被认为是最有希望的方法之一,而制约基因治疗的核心是缺少理想的基因载体[1]。JC病毒(JCV)是一种嗜神经病毒,其主要外壳蛋白VP1在体外可自我组装成病毒样颗粒(VLP)[2]。研究证明[3]VLP具有与完整病毒相同的受体结合、胞吞转运等生物活性。在体外,VLP可经二硫苏糖醇(DTT)和EGTA裂解为VP1单体;含钙离子溶液透析时,VP1又可重新组装成VLP,并包裹外源性DNA[4]。因此,VLP具有基因载体的基本特性。

  由于JCV受体广泛分布于多种组织来源的细胞表面[5],因此,VLP作为基因载体缺乏组织细胞特异性。如能使其具有靶向性,特异性结合到靶细胞,则VLP有望成为一个理想的中枢神经系统基因载体。研究表明[67],从金黄色葡萄球菌细胞膜提纯的蛋白质A(SPA),能与IgG抗体Fc端结合,将SPA的IgG结合区(Z区)插入某一蛋白质,该蛋白质即具有IgG结合功能。体外限制性蛋白水解分析发现,JCVVP1氨基末端暴露于VLP表面,对VLP颗粒形状维持并非必需,体外修饰并不影响VLP的生物特性[4]。如果将SPA的Z区插入VP1氨基末端,体外重组病毒样颗粒(VLPZ),不仅保持VLP原有的生物特性,同时也具有IgG结合功能。借助特异性抗体,VLPZ可特异性结合到靶细胞,实现治疗基因的定向传递。为此,本研究在JCV VP1氨基末端插入SPA Z区,构建原核表达质粒pET15bZVP1。

  1 材料与方法

  1.1 材料 质粒pET15bVP1由北海道大学医学部分子细胞病理研究室澤洋文教授惠赠, VP1片段全长1065bp。质粒pEZZ18购自Pharmacia Biotech公司,包含两个重复的Z片段,每个Z片段全长174bp。质粒pET15b购自Novagen公司,为含T7启动子的表达质粒,氨苄青霉素抗性,全长5708bp。

  1.2 方法

  1.2.1 扩增VP1片段 上游引物VP15′GCTCAGGCGCCGAAAATGGCCCCAACAAAAAG;下游引物VP13′GACAGGATCCTTACAGCATTTTTGTCTGCAAC。下游引物中引入BamHⅠ酶切位点,加下划线表示,扩增基因片段长1065bp。

  用2μL质粒pET15bVP1为模板,PCR试剂盒进行扩增。PCR反应条件为:预变性95℃ 2min 30s,变性94℃ 30s,退火55℃ 30s,延伸72℃ 1min 20s,共20个循环;72℃延伸5min,终止反应。PCR产物用20g/L琼脂糖凝胶电泳,确定目的条带,按照TIANGEN公司琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒说明书操作,回收目的DNA(VP1片段)。

  1.2.2 扩增Z片段 上游引物Z5′CTGCGCAACACGATGCCATGGTAGACAACAAA,下游引物Z3′ CTTTTTGTTGGGGCCATTTTCGGCGCCTGAGC。上游引物中引入NcoⅠ酶切位点,加下划线表示,扩增基因片段长174bp。

  用2μL质粒pEZZ18为模板,PCR试剂盒进行扩增。PCR反应条件为:预变性95℃ 2min 30s,变性94℃ 30s,退火55℃ 30s,延伸72℃ 30s,共20个循环;72℃延伸5min,终止反应。PCR产物用20g/L琼脂糖凝胶电泳,确定目的条带,按照TIANGEN公司琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒说明书操作,回收目的DNA(Z片段)。

  1.2.3 双重PCR连接Z片段和VP1片段 以胶回收的2μL Z片段和2μL VP1片段为模板,分别以Z5′和VP13′为上、下游引物,建立PCR反应体系。PCR反应条件为:预变性95℃ 2min 30s;变性94℃ 30s,退火55℃ 30s,延伸72℃ 1min 20s,共20个循环;72℃延伸5min,终止反应。PCR产物用20g/L琼脂糖凝胶电泳,确定目的条带,按照TIANGEN公司琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒说明书,回收目的DNA(ZVP1片段)。

  1.2.4 将ZVP1插入pET15b 连接的ZVP1片段和质粒pET15b分别用BamHⅠ和NcoⅠ进行双酶切,酶切产物用20g/L琼脂糖凝胶电泳,胶回收目的DNA。胶回收的ZVP1片段和质粒pET15b应用T4DNA连接酶连接,4℃过夜,胶纯化连接产物。

  1.2.5 连接产物的鉴定 重组质粒pET15bZVP1以BamHⅠ和NcoⅠ双酶切,20g/L琼脂糖凝胶电泳,凝胶成像系统观察,进行双酶切鉴定;BamHⅠ和NcoⅠ双酶切鉴定筛选出的阳性克隆质粒交给生物公司,使用T7和T7ter测序。

  1.2.6 VP1Z的表达和纯化 应用热激发将重组质粒pET15bZVP1转化进入感受态细胞BL21(DE3)/plys,次日挑取单菌落接种于含氨苄青霉素的LB培养基上37℃过夜培养。以1∶100的比例转接菌液,37℃继续培养3h,加入终浓度1mmol/L的IPTG,30℃继续振荡培养4h,以诱导VP1Z的表达。离心集菌后,以结合缓冲液重新悬浮,加入溶菌酶冰上反应30min,超声破碎细胞,离心收集上清。参照VLP的制备方法[4]制备VLPZ。

  2 结 果

  2.1 制备VP1 以pET15bVP1为模板,PCR扩增VP1片段。PCR产物进行凝胶电泳,显示扩增产物为单一条带,与VP1长度(1064bp)接近,证明成功扩增了VP1片段(图1)。胶回收VP1片段。

  图1 胶回收的VP1片段

  Fig.1 Purified VP1 fragment

  2.2 制备Z片段 以pEZZ18为模板,PCR扩增Z片段。取PCR扩增产物进行凝胶电泳,显示扩增产物为单一条带,与Z长度(174bp)接近,证明成功扩增了Z片段(图2)。胶回收Z片段。

  图2 胶回收的Z片段

  Fig.2 Purified Z fragment

  2.3 连接ZVP1片段 取胶回收的VP1片段和Z片段进行双重PCR。凝胶电泳显示PCR扩增产物为单一条带,片段长度与ZVP1(1239bp)接近,证明成功将Z片段和VP1连接成ZVP1(图3)。胶回收ZVP1片段。

  图3 胶回收的VP1Z片段

  Fig.3 Purified VP1Z fragment

  2.4 构建pET15bZVP1 为了将ZVP1片段插入质粒pET15b中,取质粒pET15b和ZVP1分别用BamHⅠ和NcoⅠ进行双酶切,酶切产物应用DNA连接酶连接,反应产物进行凝胶电泳,显示连接产物为单一条带,证明成功将ZVP1片段插入到质粒pET15b中(图4)。

  图4 构建的质粒pET15bZVP1

  Fig.4 Plasmid pET15b ZVP1

  2.5 pET15bZVP1的酶切鉴定 为了证明ZVP1插入原核表达质粒pET15b,取制备的重组质粒pET15bZVP1进行BamHⅠ和NcoⅠ双酶切,酶切产物进行凝胶电泳,结果显示:酶切产生了1239bp和5000bp两个片段,分别与ZVP1和质粒pET15b位置相同,证明ZVP1成功插入到质粒pET15b中(图5)。

  2.6 PET15bZVP1的测序鉴定 为了进一步证实ZVP1插入到质粒pET15b的BamHⅠ和NcoⅠ两个酶切位点之间,将提取的重组质粒pET15bZVP1送上海生工测序鉴定。前向测序从40bp开始,CCATGG为NcoⅠ酶切位点,后接Z、VP1序列;后向测序,从24bp开始,GGATCC为BamHⅠ酶切位点,后接VP1序列,证实ZVP1片段成功插入pET15b。

  图5 pET15bZVP1双酶切电泳

  Fig.5 Identification of pET15bZVP1 by digestion with restriction enzyme

  1:标准核酸分子质量;2:质粒PET15b;3:ZVP1片段;4:质粒PET15bZVP1经BamHⅠ、NcoⅠ酶切后的产物。

  2.7 VP1Z的表达和纯化 VP1大小约42~45ku,在VP1氨基末端插入PAZ区为174bp,故重组的VP1Z约为50ku。取重组蛋白进行SDSPAGE电泳和Western blotting,结果显示pET15bZVP1转染菌经IPTG诱导后出现50ku目的条带,与预期的VP1Z蛋白分子质量大小相符(图6)。

  3 讨 论

  为了使VLP能特异性结合到靶细胞,本研究利用蛋白质A能与IgG抗体Fc端结合的特性,将SPA的IgG结合区Z区插入VP1的氨基末端,体外表达VP1Z。使体外重组的VLPZ既有抗体结合功能,又保持VLP原有的受体结合、胞吞、转运等特性。为此,本研究首先以pET15bVP1、pEZZ18为模板,分别扩增VP1、Z片段,应用重组PCR技术构建ZVP1。然后通过限制性内切酶BamHⅠ和NcoⅠ双酶切,将ZVP1片段插入质粒pET15b,成功构建了原核表达质粒pET15bZVP1,并经酶切鉴定和DNA测序,证实ZVP1插入到原核表达质粒pET15b的BamHⅠ和NcoⅠ两个酶切位点之间,并在体外成功表达了重组蛋白VP1Z。

  为了将VP1与Z片段连接成VP1Z片段,本研究选择了重组PCR。该技术是一种用于体外基因重组的简单、高效、快速技术,在基因重组过程中,不受载体和待连接DNA片段内部自身酶切位点的制约,连接时不依赖于限制性内切酶和连接酶,从根本上摆脱DNA片段内部酶切位点的束缚,具有传统的DNA重组技术无法比拟的优势[8]。其中重叠延伸拼接(splicing by overlap extension, SOE)通过重叠延伸引物(上游片段的3端碱基序列和下游片段5端碱基序列的共线化形式)人为地在不同的靶基因片段上引入重叠互补区,引导这些片段顺序连接。主要用于制备嵌合分子或完整cDNA、框内删除和插入片段以及定点突变[8]。因此,本研究选择SOE技术,成功将VP1与Z片段连接在一起,构建了ZVP1片段。

  pET15b是常用的原核表达质粒,不仅具有拷贝数高、分子质量小、带有筛选标记、具有较多单一限制性酶切位点及转录终止子等优点,而且Novagen公司的pET系统使用T7启动子。目的基因被克隆到pET质粒载体上,受噬菌体T7强转录及翻译信号控制,基因表达由宿主细胞提供的T7RNA聚合酶诱导,不仅十分有效,而且具有选择性。充分诱导时,几乎所有的细胞资源都用于表达目的蛋白。诱导表达后数小时,目的蛋白通常可以占到细胞总蛋白的50%以上。在非诱导条件下,可以使目的基因完全处于沉默状态而不转录。用不含T7RNA聚合酶的宿主菌克隆目的基因,还可避免目的蛋白对宿主细胞的潜在毒性造成的质粒不稳定[9]。在我们以前的研究中,已经利用质粒载体在体外成功表达了VP1基因片段,制备了VLP[4],并证明VLP以完整的颗粒形式包裹外源基因进入细胞核[10]。因此,本研究选择质粒pET15b作为基因载体。

  pET翻译载体在克隆和标签区域后以3种阅读框形式提供翻译终止密码子以及下游T7 转录终止子。终止子对于大多数蛋白的高效表达并非必要,但对于一些方向与目的基因一致的氨苄抗性基因(β内酰胺酶)的pET质粒情况就不同了。如果T7转录终止子在克隆时被去掉,就会随目的蛋白表达增加,T7RNA聚合酶造成高效通读转录。几乎所有pET载体都能表达不带载体编码序列的蛋白。许多载体提供一个NdeⅠ或NcoⅠ位点,以便在插入编码序列5′端克隆进AUG起始密码子。与此类似,在插入片段中带上翻译终止密码子,就可以避免在蛋白的C端带有载体编码序列。在pET载体中,NcoⅠ位点(CCATGG)中的ATG三联密码子编码T7RNA聚合酶转录产物N端甲硫氨酸AUG起始密码子。因此,本研究将ZVP1插入NcoⅠ位点。

  本研究成功在JCV VP1氨基末端插入SPA的Z区,构建了原核表达质粒pET15bZVP1,并在体外表达VP1Z,但是表达的VP1Z能否重组成病毒样颗粒(VLPZ),重组的VLPZ是否具有与野生型VLP相同的生物活性,是否具有抗体结合特性,均有待于进一步研究。

  致谢:感谢北海道大学医学部分子细胞病理研究室澤洋文教授惠赠质粒pET15bVP1。

  【参考文献】

  [1]GLORIOSO JC, MATA M, FINK DJ. Therapeutic gene transfer to the nervous system using viral vectors [J]. J Neurovirol, 2003, 9(2):165172.

  [2]GOLDMANN C, PETRY H, FRYE S, et al. Molecular cloning and expression of major structural protein VP1 of the human polyomavirus JC virus:formation of viruslike particles useful for immunological and therapeutic studies [J]. J Virol, 1999, 73(5):44654469.

  [3]CHANG D, FUNG CY, OU WC, et al. Selfassembly of the JC virus major capsidprotein, VP1, expressed in insect cells [J]. J Gen Virol, 1997, 78(6):14351439.

  [4]QU Q, SAWA H, SUZUKI T, et al. Nuclear entry mechanism of the human polyomavirus JC viruslike particle. Role of importins and the nuclear pore complex [J]. J Biol Chem, 2004, 279(26):2773527742.

  [5]SUZUKI S, SAWA H, KOMAGOME R, et al. Broad distribution of the JC virus receptor contrasts with a marked cellular restriction of virus replication [J]. Virol, 2001, 286(1):100112.

  [6]ONEILL E, POZZI C, HOUSTON P, et al. A novel Staphylococcus aureus biofilm phenotype mediated by the fibronectinbinding proteins, FnBPA and FnBPB [J]. J Bacteriol, 2008, 190(11):38353850.

  [7]KOROKHOV N, MIKHEEVA G, KRENDELSHCHIKOV A, et al. Targeting of adenovirus via genetic modification of the viral capsid combined with a protein bridge [J]. J Virol, 2003, 77(24):1293112940.

  [8]王皓,康现江,王琦. 重组PCR技术研究进展和应用 [J]. 中国生物工程杂志, 2007, 27(5):153156.

  [9]姚玲玲,王家宁,黄永章,等. pET15bPEP1CAT原核表达质粒的构建及PEP1CAT融合蛋白的表达与纯化 [J]. 南方医科大学学报, 2006, 26(9):13191325.

  [10]屈秋民,郭峰,乔晋,等. JC病毒以完整的颗粒形式转运进入细胞核 [J]. 中华微生物学和免疫学杂志, 2005, 25(2):128132.

医思倍微信
医思倍移动端
医思倍小程序