6羟基多巴胺诱导SHSY5Y细胞帕金森病模型中1433蛋白表达的研究
发表时间:2010-05-04 浏览次数:432次
作者:王丹萍 常 明 解洪荣 田明秀 胡林森 作者单位:(吉林大学第一医院神经内科蛋白质组学实验室,吉林 长春 130021)
【摘要】 目的 应用蛋白质组学技术研究6羟基多巴胺(6OHDA)诱导SHSY5Y细胞帕金森病(PD)模型中1433蛋白的表达变化。方法 在建立6OHDA诱导SHSY5Y细胞PD模型的基础上,分别提取6OHDA实验组和对照组孵育24 h的细胞总蛋白,应用荧光差异双向凝胶电泳(DIGE)技术获得蛋白点的差异表达信息,运用基质辅助激光解吸/电离飞行时间质谱仪(MALDITOF MS)鉴定出差异蛋白质。结果 DIGE分析发现实验组有一个表达明显上调的差异蛋白质点(P<0.05),经质谱分析鉴定确认为1433蛋白。结论 6OHDA诱导SHSY5Y细胞的PD模型中1433蛋白表达上调,提示1433蛋白上调可能与PD的发病机制有关。
【关键词】 6羟基多巴胺;SHSY5Y;帕金森病;1433蛋白;IDGE
帕金森病(PD)是一种常见的中老年神经系统变性疾病,其病理特征是中脑黑质致密部多巴胺(DA)能神经元进行性变性、坏死,但PD的发病机制现仍不完全清楚。神经毒素6羟基多巴胺(6OHDA)是DA神经递质的羟基化类似物和选择性DA神经元化学损毁剂,它选择性地作用于DA神经元,适用于研究DA能神经变性的详细机制及筛选新的治疗药物。SHSY5Y细胞系来源于人神经母细胞瘤株,其分化程度低、繁殖快,细胞形态、生理及生化功能与人正常神经细胞相似〔1〕。迄今为止尚无应用蛋白质组学技术对该模型进行系统研究的报告。本实验在建立6OHDA诱导SHSY5Y细胞PD模型的基础上应用荧光差异凝胶电泳(Differential Gel Electrophoresis,DIGE)技术研究6OHDA对SHSY5Y细胞毒性作用机制中的相关蛋白,为PD的发病机制及临床治疗提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 细胞、试剂及仪器 SHSY5Y细胞来自American Type Culture Collection(ATCC)。6OHDA、DMSO、胰蛋白酶购自Sigma公司。高糖DMEM培养基购自Gibco公司;新生胎牛血清购自天津市灏洋生物制品科技有限责任公司;Cleanup试剂盒、2D Quant试剂盒、固相24 cm IPG胶条(pH4~7)、CyDye荧光染料(Cy2,Cy3,Cy5)以及其他双向电泳和质谱分析试剂,Ettan IPGphor Ⅱ等电聚焦仪、DALT Six垂直电泳系统、切胶仪、酶切仪、点靶仪和基质辅助激光解吸/电离飞行时间质谱仪(MALDITOF MS)均购自Amersham BiosciencesGE Healthcare公司。荧光倒置显微镜为Olympus公司产品。
1.2 方法
1.2.1 细胞培养 用含5%的新生胎牛血清、100 μg/ml青霉素/链霉素的高糖DMEM培养基培养细胞,置于37℃、5% CO2培养箱中,隔天换液。待细胞进入对数生长期后,用0.25%的胰蛋白酶消化后,以2×105/ml密度接种于底面积25 cm2的培养瓶(15 ml/瓶)。孵育24 h后,实验组和对照组分别加入6OHDA(终浓度为6OHDA 100 μmol/L,VitC 0.002%)和0.2% VitC溶液(终浓度为0.002%),继续孵育24 h。取4批不同代数的细胞进行培养。
1.2.2 蛋白提取 收取细胞,加入细胞裂解液(7 mol/L尿素,2 mol/L硫脲,4% CHAPS,30 mmol/L Tris),经室温作用1 h后离心取上清。蛋白样品经cleanup试剂盒去除杂质后,再用2D Quant试剂盒测定浓度。
1.2.3 DIGE 将各样品pH值调至8.5,进行分组并制备内标,再以400 pmol CyDye:50 μg蛋白的比例标记各样品及内标,避光冰浴30 min后,用1 μl 10 mmol/L赖氨酸终止反应。分析胶:内标蛋白、对照组及实验组蛋白分别进行荧光(Cy2、Cy3、Cy5)标记。按标准实验规程进行水化及聚焦电泳:采用线性IPG胶条(pH4~7),定量蛋白上样,水化和电泳,并灌制24 cm×20 cm PAGE胶,进行IPG胶条平衡及转移,24 cm电泳仪垂直电泳。制备胶:取对照组及实验组蛋白样品各800 μg,酸性端放置蛋白分子量标志,按分析胶方法进行双向电泳。考马斯亮蓝染色。
1.2.4 图像分析及统计学处理 使用Typhoon 9400扫描仪对分析胶进行图像扫描,并且以De CyderTM分析软件进行蛋白变化比对,其中AV比值>1.5,配对t检验P<0.05为有显著差异的蛋白点。切取与差异蛋白相匹配的制备胶蛋白点,经酶切(20 μg/L胰酶,37℃,2 h)、点靶后,应用MALDITOF MS分析蛋白质肽质量指纹谱,并将结果输入NCBI蛋白质数据库进行检索和鉴定。
2 结 果
应用DeCyder软件分析6OHDA实验组与对照组蛋白质表达量差异。其中编号为1 584的蛋白点,出现率100%,实验组较对照组升高1.67倍,差异有显著性(P<0.05),见图1。经MALDITOF质谱分析,该蛋白为1433蛋白(期望值:O.009;序列覆盖率:30.2%;NCBI数据库编号:gil3928824),肽质量指纹谱见图2。
3 讨 论
1433蛋白是1433酸性蛋白家族成员,广泛分布于从植物到哺乳动物等所有真核生物中,哺乳动物有7种异构体,主要以同源或异源二聚体形式存在于细胞质中〔2〕,通过磷酸化丝/苏氨酸作用与靶蛋白或靶蛋白的两个结构域结合。1433蛋白参与细胞的多种生理过程并在其中发挥重要作用,例如调节细胞凋亡、促细胞分裂信号传导,以及对细胞生长、分化、黏附、增殖和离子通道的调节〔3,4〕。
Rafl是一种丝氨酸/苏氨酸激酶,在细胞的生长、分化和肿瘤基因的转化中发挥重要的作用。研究已经证实1433蛋白通过对Raf 1途径的调节在中枢神经系统的神经元分化和功能上发挥重要作用,它能够刺激有活性和无活性的Rafl的迅速转换,介导Rafl与其他蛋白之间的相互联系并且激活Rafl,使MAP激酶磷酸化,刺激MAPK从而使基因转录导致细胞分裂〔5〕。1433蛋白能与Rafl、PKC、Cdc25C、KSR、Bcr、Ca2+/CaM激酶、Bad和跨膜蛋白受体等多种信号蛋白结合,这说明1433蛋白在信号转导过程中发挥着重要作用〔6〕。已有实验表明1433蛋白过表达通过上调Bcl2蛋白表达并下调Bad蛋白表达,减少了MPP+诱导的PC12细胞的凋亡〔7〕。1433配体Bad(与Bcl2相关的死亡蛋白)是连接胞内存活/凋亡信号与线粒体凋亡机制的重要环节。在正常细胞,Bad分布在胞质;当有凋亡信号时,Bad进入线粒体与BclxL或Bcl2结合促进细胞凋亡。通过与Bad的结合,1433蛋白由于将Bad隔离于胞液而防止了细胞凋亡〔8〕。
PD的一个主要特征是黑质多巴胺能神经元坏死,伴有纹状体内多巴胺含量减少。酪氨酸羟化酶是多巴胺合成的限速酶,1433蛋白与酪氨酸羟化酶的结合是酪氨酸羟化酶最佳的磷酸化活化方式〔9〕。1433蛋白能够抑制酪氨酸羟化酶去磷酸化,延长并提高酪氨酸羟化酶的活性,增加多巴胺的产生〔10〕。研究证实抑制1433表达对细胞是有害的,1433等亚型及其特殊功能可以作为选择性的药物治疗靶点〔11〕。
DIGE系统在双向电泳技术的基础上,结合多重荧光分析的方法,在同一块胶上共同分离多个分别由不同荧光标记的样品,是目前定量蛋白质组学研究中可信度和准确性最高的技术之一〔12〕。本研究应用DIGE技术对6OHDA诱导SHSY5Y细胞的PD模型进行研究,证实1433蛋白表达显著增高。认为1433蛋白表达增高是细胞对6OHDA神经毒素的一种防御性保护反应,可提高酪氨酸羟化酶的活性,增加DA的产生;可通过与Bad的结合防止细胞凋亡;从而发挥对SHSY5Y细胞的保护作用。这些结果可能为PD的治疗提供新的药物靶点。同时本研究中1433蛋白表达增高进一步证明了1433蛋白确实参与PD的病理生理过程,可能与PD的发病机制有关。
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12 侯 澍,胡林森,常 明,等.NGF诱导PC12细胞早期分化的DIGE分析〔J〕.脑卒中与神经疾病杂志,2006;23(1):524.