老年人食管鳞状细胞癌、腺癌和化生
发表时间:2009-06-24 浏览次数:698次
【关键词】 癌,鳞状细胞;食管肿瘤,腺癌;微卫星重复;聚合酶链反应;barrett食管;化生;增生;序列分析
摘要: 目的 评估老年人食管鳞状细胞癌(ESCC)、食管腺癌(EADC)和Barrett化生不典型增生腺癌序列DNA微卫星的改变。 方法 应用稀释性PCR技术检测老年人ESCC、EADC和Barrett化生不典型增生腺癌序列中D2S123、D3S1616、D3S1300、BATRII、D5S346、D17S787和D18S61 7个位点DNA微卫星的改变。 结果 在非稀释DNA中,23例老年人ESCC和18例老年人EADC微卫星不稳定性(MSI)的频率分别是47.8% (11/23例)和38.9%(7/18例),杂合性丢失(LOH)的频率分别是26.1%(6/23例)和16.7%(3/18例),两者的MSI或LOH频率比较没有显著差别(P>0.05)。在稀释DNA中,8例老年人正常食管鳞状上皮和Barrett化生异型增生腺癌序列的MSI和LOH频繁出现,尤其在D3S1616、D2S123、D3S1300和D17S787位点上,与非稀释DNA的MSI和LOH频率相比有显著差别(P<0.05)。 结论 老年人ESCC和EADC微卫星改变没有差别。老年人正常食管鳞状上皮和Barrett化生异型增生腺癌组织DNA的MSI和LOH普遍存在,它们可能是EADC发生发展的早期分子事件,D3S1616、D2S123、D3S1300和D17S787位点的微卫星改变可能在此过程中起着重要作用。
关键词: 癌,鳞状细胞;食管肿瘤,腺癌;微卫星重复;聚合酶链反应;barrett食管;化生;增生;序列分析
Barrett食管发生腺癌危险性是一般人群的125倍,其中间过程是柱状化生上皮向不典型增生上皮转化,称之为Barrett化生不典型增生腺癌序列[12]。食管鳞状细胞癌(ESCC)和食管腺癌(EADC)是老年人的常见病。老年人反流性食管炎合并的Barrett食管比年轻人的更易发生不典型增生和腺癌[3]。为了更好地了解老年人ESCC和EADC的发生发展过程,笔者检测了ESCC、EADC、正常食管鳞状上皮和Barrett化生不典型增生腺癌序列组织中D2S123、D3S1616、D3S1300、BATRII、D5S346、D17S787和D18S61 7个位点DNA微卫星的改变。
1 材料与方法
1.1 病例人与标本 选自福建医科大学附属厦门第一医院病理科2002年3月~2005年10月存档手术切除食管癌石蜡标本41例,患者年龄(68.2±9.6)岁(60~80.5岁);术前未经过化疗和放疗,标本经福建医科大学附属厦门第一医院伦理委员会批准收集。进行常规组织切片,HE染色和病理诊断。组织病理学分析:23例ESCC,18例EADC,其中8例EADC在癌组织旁同时存在Barrett化生和不典型增生上皮。由2位病理医师进行组织病理学分析并核对。
1.2 组织病理学分析、显微切割、DNA提取和DNA稀释 先行常规组织切片、HE染色和组织病理学分析,在显微镜下标记所要切割的组织区域。再切厚度为10 μm的组织3片,在显微镜下按照HE染色切片上的标记进行显微切割,取出组织,装入0.5 mL离心管。余下蜡块组织再行常规切片、HE染色并与切割前的切片比较(图1)。切割不同蜡块时均清洁石蜡切片机刀头和刀片,显微切割不同组织均用不同的洁净器械。采用蛋白酶K(10 mmol/L TrisHCl,pH 8.0,100 mmol/L KCl,2.5 mmol/L MgCl2,0.45% Tween 20,2.5 mg/mL蛋白酶K)消化方法提取基因组DNA:组织在50 μL蛋白酶K消化液中95 ℃变性10 min,常温冷却1 h,然后在65 ℃孵育1 h,最后在95 ℃变性10 min去除多余的蛋白酶K,混合物离心(5 000 r/min,5 min),吸出上清液,移至洁净的离心管。DNA质量测定值在1.072 3~1.240 1[D(260 nm)/D(280 nm)],DNA含量为255.36~406.98 ng/μL。8例正常鳞状上皮、Barrett化生上皮、不典型增生上皮和EADC组织的DNA分别按1∶100,1∶1 000,1∶5 000,1∶10 000和1∶50 000稀释度用三蒸水进行稀释。
1.3 稀释性PCR和微卫星改变 7个微卫星位点是D2S123,D3S1616,D3S1300,BATRⅡ,D5S346,D17S787和D18S61(PCR引物购自美国Research Genetics公司),分别位于hMSH2,hMLH1,FHIT和TGFβRⅡ基因内,MCCAPC基因之间以及p53和DCC基因邻近。每个不同稀释度(1∶100,1∶1 000,1∶5 000,1∶10 000,1∶50 000)的PCR扩增反应均包含1 μL DNA模板,0.4 μCi:[r32P]ATP放射性标志的微卫星引物,0.2 mmol/L dNTP,10 mmol/L TrisHCl,pH 8.3,1.5 mmol/L MgCl2,50 mmol/L KCl和0.4 U的Taq多聚酶,反应总体积为10 μL。PCR反应条件为:95 ℃ 5 min→95 ℃ 30 s→58 ℃ 40 s→72 ℃ 1 min,共35个循环,最后72 ℃延伸2 min。
A:切割前;B:显微切割后.
图1 Barrett食管不典型增生上皮(HE染色 ×200)(略)
Fig 1 Epithelial dysplasia in Barrett esophagus (HE staining ×200)
图1 Barrett食管不典型增生上皮(HE染色 ×200)(略)
1 Epithelial dysplasia in Barrett esophagus (HE staining ×200)
图2 Barrett食管不典型增生上皮被显微切割后( HE染色 ×200)(略)
Fig 2 Epithelial dysplasia after microdissection(HE staining ×200)
PCR引物序列如下: D2S123上游引物:5’ACA TTG CTG GAA GTT CTG GC3’ D2S123下游引物:5’CCT TTC TGA CTT GGA TAC CA3’ D3S1616上游引物:5’CTC CCT ACC TGA AAA GAT GC3’ D3S1616下游引物:5’TCG GCT TAA AGA CTC AGT TTA TT3’ D3S1300上游引物:5’AGC TCA CAT TCT AGT CAG CCT3’ D3S1300下游引物:5’GCC AAT TCC CCA GAT G3’ BATRII上游引物:5’CTT TAT TCT GGA AGA TGC TGC3’ BATRII下游引物:5’GAA GAA AGT CTC ACC AGG C3’ D5S346上游引物:5’ACT CAC TCT AGT GAT AAA TCG G3’ D5S346下游引物:5’GTT TCC ATT GTA GCA TCT TGA C3’ D17S787上游引物:5’NED TGG GCT CAA CTA TAT GAA CC3’
D17S787下游引物:5’TTG ATA CCT TTT TGA AGG GG3’ D18S61上游引物:5’ATT TCT AAG AGG ACT CCC AAA CT3’ D18S61下游引物:5’ATA TTT TGA AAC TCA GGA GCA T3’ 对同一个稀释度DNA标本均进行多次PCR检测,PCR产物用亚甲蓝加样缓冲液按1∶1稀释,该缓冲液包含95%亚甲蓝,0.05%溴芬蓝,0.05%埃先蓝和20 mmol/L EDTA。5 μL的PCR产物与2 μL变性染料混匀后在7%变性聚丙烯酰胺凝胶上电泳2~4 h,凝胶在真空干燥机80 ℃干燥后,用Kodak胶片(美国Kodak公司)曝光6~24 h。 微卫星改变分析:以同一例正常鳞状上皮非稀释DNA为对照,与其对比。若电泳图上出现额外新的等位基因条带,被确定为微卫星不稳定性(MSI)。在杂合子中,等位基因上出现≥2倍放射性密度减弱,被确定为杂合性丢失(LOH)。为了保证等位基因在放射性自显影胶片上容易辨别出来,可进行多次曝光比较,放射性自显影结果分别由2位医师独立分析并核对。
1.4 统计学处理 统计处理应用SPSS 12.0分析,Fisher精确检验。P<0.05为差别有统计学意义。
2 结果
2.1 ESCC和EADC中非稀释性DNA微卫星的改变 MSI在ESCC和EADC中分别为47.8%(11/23例)和38.9%(7/18例),LOH分别为26.1%(6/23例)和16.7%(3/18例)。ESCC和EADC比较,MSI或LOH频率没有显著差别(P>0.05,表1)。
2.2 正常食管鳞状上皮和Barrett化生不典型增生腺癌序列稀释性DNA微卫星的改变 8例老年人正常食管鳞状上皮和Barrett化生不典型增生腺癌序列稀释性DNA的MSI和LOH频繁出现,与各种组织非稀释性DNA的结果相比,绝大多数有显著差别(P<0.05,表1)。DNA稀释度从1∶100倍到1∶5 000倍时,MSI和LOH频率在上述7个位点上的出现逐渐增多,尤其是在D3S1616,D2S123,D3S1300和D17S787位点上。但当DNA稀释到1∶5 000倍以上时,MSI和LOH频率则减少或无实验结果。MSI和LOH的表现形式大多数相同,少数MSI不同,少数LOH出现在不同等位基因上,个别位点有MSI和LOH并存现象(图2,表2)。
表1 不同食管组织非稀释和稀释DNA微卫星改变(略)
Tab 1 Microsatellite alterations of undilution and dilution DNA in different esophageal tissues
表中数据为例数. MSI:微卫星不稳定性; LOH:杂合性丢失. 与非稀释DNA组比较, ☆:P<0.05, ☆☆:P<0.01.
表2 不同食管组织非稀释和稀释DNA在7个位点上的微卫星改变(略)
Tab 2 Microsatellite alterations of undilution and dilution DNA at 7 loci in different esophageal tissues
表中数据为例数. MSI:微卫星不稳定性; LOH:杂合性丢失.
3 讨论 食管腺癌的发生是通过Barrett化生不典型增生腺癌序列的过程,很多分子异常,如原癌基因改变、抑癌基因突变、LOH和一些蛋白的异常表达与腺癌的发生发展有关[47]。近年来发现,微卫星的改变在食管腺癌中频繁或不频繁地出现 [810]。本研究的目的是探讨老年人Barrett化生不典型增生腺癌序列和正常鳞状上皮的微卫星改变。采用显微切割技术,确保较丰富和较纯净的组织供研究。 研究发现,在老年人ESCC和EADC中,MSI分别为47.8%(11/23例)和38.9%(7/18例),LOH分别为26.1%(6/23例)和16.7%(3/18例),MSI或LOH频率均无显著差别,说明MSI和LOH在老年人ESCC和EADC中较普遍,结果与文献报道相似[8,11];但Yanagi等认为MSI在ESCC 和EADC中的频率很低,但其研究例数很少[9]。
1:BE非稀释性; 2:N非稀释性; 3:N 1∶100; 4:N 1∶1 000; 5:N 1∶5 000; 6:N 1∶10 000; 7:N 1∶50 000; 8:BE 1∶100; 9:BE 1∶1 000; 10:BE 1∶5 000; 11:BE 1∶10 000; 12:BE 1∶50 000. ↓和分别为微卫星不稳定性或杂合性丢失. BE:Barrett食管化生上皮DNA,N:同一病人正常鳞状上皮DNA.
图2 稀释DNA微卫星的改变(略)
Fig 2 Microsatellite alterations in dilution DNA
箭(↓)和箭头(▲)分别指的是微卫星不稳定性和杂合性丢失.BE示Barrett食管化生上皮DNA,N示同一病人正常鳞状上皮DNA,1∶100~1∶50 000示稀释倍数.
图3 稀释DNA微卫星的改变(略)
Fig 2 Microsatellite alterations in dilution DNA
有学者认为,肉眼可见的肿瘤是一个亚群或几个亚群细胞克隆增长的结果[12],这暗示一群肿瘤细胞可能共同拥有某些遗传改变。所以,本研究选择Barrett化生不典型增生腺癌序列及其旁正常鳞状上皮进行研究,以探讨微卫星变化是否是它们共同的分子事件,但实验结果显示,在非癌组织非稀释DNA中很少发现微卫星改变。另据报道,混杂在一群基因正常细胞中的几个基因异常细胞是很难被发现的,只有当DNA稀释到0.1%浓度或0.5~3个细胞量的DNA时,这些基因异常的细胞才容易被发现[13]。所以,本研究将DNA模板稀释后行PCR扩增(称为稀释性PCR)再进行微卫星改变分析。结果显示,在Barrett化生不典型增生腺癌序列稀释DNA结果中,MSI和LOH频繁出现,并随DNA稀释度的增加而增多,与非稀释DNA的结果相比较均有显著差别;正常鳞状上皮MSI频率也有显著差别。说明MSI和LOH在上述组织中普遍存在。当稀释度>15 000倍时,MSI和LOH出现的频率就减少或实验结果无法获得,这可能是因为DNA模板太少,PCR产物无法获得的缘故。进一步分析发现,在Barrett化生不典型增生腺癌序列及其旁正常鳞状上皮稀释DNA中,微卫星改变主要集中在D3S1616,D2S123,D3S1300和D17S787位点上。这些共同分子改变提示,在相同环境生长的正常细胞群中,可能有部分的细胞获得微卫星改变并不断克隆扩增,与导致肿瘤有关。 本研究表明,微卫星改变普遍存在于老年人正常鳞状上皮和Barrett化生不典型增生腺癌序列中,这些改变从分子水平上支持了Barrett化生不典型增生腺癌序列发展的观点。结果提示,在EADC发生发展过程中,与微卫星改变相关;MSI和LOH可能是早期分子事件,D3S1616,D2S123,D3S1300和D17S787位点微卫星改变在此过程中起着重要作用,它们可能作为EADC早期诊断的分子标志。
参考文献:
[1] Romagnoli S,Roncalli M,Graziani D,et al. Molecular alterations of barrett's esophagus on microdissected endoscopic biopsies[J]. Lab Invest, 2001,81:241247.
[2] Rossi M,Barreca M,de Bortoli N,et al. Efficacy of Nissen fundoplication versus medical therapy in the regression on lowgrade dysplasia in patients with barrett esophagus[J]. Ann Surg, 2006,243:5863.
[3] 郑松柏,项 平,徐富星,等. 老年人反流性食管炎1 119例分析[J]. 中华老年医学杂志, 2005,24:574576.
[4] Tselepis C,Morris C D,Wakelin D,et al. Upregulation of the oncogene in Barrett’s adenocarcinoma: induction of cmyc by acidified bile acid in vitro[J]. Gut, 2003,52:174180.
[5] Walch A K,Zitzelsberger H F,Bruch J,et al. Chromosomal imbalances in Barrett’s adenocarcinoma and the metaplasiadyspasiacarcinoma sequence[J]. Am J Pathol, 2000,156:555566.
[6] 林 晴,王 雯. 环氧合酶2表达与Barrett食管及食管腺癌的相关性[J]. 福建医科大学学报, 2006,40:2629.
[7] Walch A K,Zitzelsberger H F,Bink K,et al. Molecular genetic changes in metastatic primary Barrett's adenocarcinoma and related lymph node metastases: comparison with nonmetastatic Barrett's adenocarcinoma[J]. Mod Pathol, 2000,13:814824.
[8] Kulke M H,Thakore K S,Thomas G,et al. Microsatellite instability and hMLH1/hMSH2 expression in Barrett esophagusassociated adenocarcinoma[J]. Cancer, 2001,91:14511457.
[9] Yanagi M,Keller G,Mueller J,et al. Comparison of loss heterozygosity and microsatellite instability in adenocarcinomas of distal esophagus and proximal stomach[J]. Virchows Arch, 2000,437:605610.
[10] Falkenback D,Johansson J,Halvarsson B,et al. Defective mismatchrepair as a tumorigenic pathway in Barrett esophagus associated adenocarcinomas[J]. Cancer Genetics Cytogenetics, 2005,157:8286.
[11] Kagawa Y,Yoshida K,Hirai T,et al. Microsatellite instability in squamous cell carcinomas and dysplasias of the esophagus[J]. Anticancer Res, 2000,20:213217.
[12] Gleeson C M,Sloan J A,McGuigan J A,et al. Barrett's oesephagus: microsatellite analysis provides evidence to support the proposed metaplasisdysplasiacarcinoma sequence[J]. Genes Chromosomes Cancer, 1998,21:4960.
[13] Parson R,Li G M,Longley M,et al. Mismatch repair deficiency in phenotypically normal cells[J]. Science, 1995,268:738740.
基金项目: 厦门市科技基金资助项目(3502Z20052018),厦门市卫生局重点科研基金资助项目(WSK0301)