VEGF 反义寡核苷酸抑制胆囊癌生长增殖和凋亡的体外实验研究
发表时间:2012-01-19 浏览次数:340次
作者:庞作良,李海军,毛拉艾沙•买买提
【摘要】目的体外研究Oligofectamine介导的VEGF 反义寡核苷酸转染对胆囊癌GBCSD细胞生长、增殖和凋亡的影响。方法运用Oligofectamine介导VEGF 反义寡核苷酸(Antisense oligodeoxynucleotides,ASODN)和错义寡核苷酸(Scrambled Oligodeoxynucleotide,SODN)转染人胆囊癌GBCSD细胞,MTT法测定转染后各组细胞的生长曲线及抑制率,流式细胞术检测转染后不同时间各组细胞凋亡情况。结果SODN、SODN+Oligofectamine对GBCSD细胞生长无显著影响 (P>0.05),而ASODN及ASODN+Oligofectamine则能显著抑制细胞生长 (P<0.05),且ASODN+Oligofectamine对细胞生长增殖抑制作用较ASODN组更为强(P<0.05)。流式细胞术检测结果发现ASODN+Oligofectamine能促进GBCSD细胞凋亡(P<0.05)。结论VEGF ASODN转染能抑制胆囊癌GBCSD细胞生长和增殖,Oligofectamine介导能明显增强VEGF ASODN的抑制作用;Oligofectamine介导VEGF 反义寡核苷酸转染能促进胆囊癌GBCSD细胞的凋亡。
【关键词】 胆囊癌细胞株GBCSD;VEGF;反义寡核苷酸;Oligifectamine;凋亡
Experiment of Oligofectamine Mediated VEGF ASODN Transfection on GBCSD Cell Growth, Proliferation and Apoptosis in Vitro
PANG Zuoliang, LI Haijun, MAIMAITI Maolaaisha
Department of Hepatobilopancreatic Surgery,Affiliated Tumor Hospital of Xinjiang Medical University,Urmqi 830011, China
Abstract:ObjectiveTo investigate the effect of oligofectamine mediated VEGF ASODN transfection on GBCSD cell growth, proliferation and apoptosis in vitro. MethodsGBCSD cells were transfected with VEGF ASODN and SODN mediated by oligofectamine. The change of transfected GBCSD cells growth and proliferation activity by MTT, and apoptosis by flow cytometry were assessed. ResultsThe transfected GBCSD cells growth and proliferation activity tested in groups of SODN and SODN+oligofectamine had no difference as compared with control group(P>0.05), but as for the cells of ASODN and ASODN+oligofectamine, the growth and proliferation activity were significantly inhibited(P<0.05), moreover, the effect of ASODN+oligofectamine was more significant than that of ASODN(P<0.05). The results of flow cytometry revealed ASODN+oligofectamine could accelerate transfected GBCSD cells apoptosis(P<0.05). ConclusionVEGF ASODN could inhibit GBCSD cells growth, proliferation and accelerate apoptosis. The oligofectamine could strengthen the effect of ASODN.
Key words:GBCSD cell;VEGF;ASODN;Oligifectamine;Apoptosis
0引言
VEGF通过与其特异性受体(VEGFR)结合,刺激血管内皮细胞增殖和迁移,促进新生血管生成,在肿瘤的生长和转移中起重要作用。抑制VEGFR信号转导通路的任何一个环节,就可能防止肿瘤的进展与转移。ASODN因有专一序列的寡聚脱氧核苷酸,故能特异阻断靶基因的复制、转录和翻译,是目前迅速发展的一种新型的基因治疗药物[1]。Oligofectamine是一种专门用于寡核苷酸转染的阳离子脂质体,具有较高转染率。本实验体外运用Oligofectamine介导的VEGF ASODN转染人胆囊癌GBCSD细胞, 通过MTT和流式细胞术观察VEGF ASODN对GBCSD细胞生长增殖和凋亡的影响。
1材料和方法
1.1材料人胆囊癌细胞株GBCSD(中科院上海细胞生物学研究所),四甲基偶氮唑盐(MTT)、二甲基亚砜(DMSO)(宝泰克公司),ANNEXINV/PI凋亡试剂盒(CALTAG公司),OligofectamineTM Reagent(20μM)(Invitrogen公司),VEGF反义寡核苷酸、VEGF错义寡核苷酸(上海生工生物工程公司),流式细胞仪(FACScan型)(美国BD公司)。
1.2方法
1.2.1细胞培养人胆囊癌GBCSD细胞用含10%小牛血清的RPMI1640培养液 (含青霉素和链霉素各100μg/ml), 37℃,5%CO2培养箱培养。 待细胞长满瓶底70%~80%时采用0.25%胰酶(含0.02%EDTA)消化传代,3~4天传代1次,取传代后24~48h处于指数生长期的细胞备用。细胞经0.4%台盼蓝染包,拒染率>95%。
1.2.2寡核苷酸合成VEGF反义寡核苷酸及错义寡核苷酸序列参照文献[2], VEGF反义寡核苷酸(ASODN)序列为: 5′TGGCTTGAAGATGTACTCGAT3′,VEGF错义寡核苷酸 (SODN)序列为:5′TACGTAGTATGGTGTACGATC3′,全硫代修饰,保存于-70℃待用。OligofectamineTM介导的寡核苷酸转染参照oligofectamineTM Reagent 说明书和文献进行[35]。
1.2.3四甲基偶氮唑蓝(5diphenyl tetrazolium bromide,MTT)法检测 SODN和OligofectamineTM对GBCSD细胞的毒性试验实验设对照组,2.5、5、10和20μmol/L SODN组及0.5、1、2和4μl Oligofectamine组。GBCSD细胞37℃,5%CO2培养箱培养24h后,无血清RPMI1640换液,并分别加入SODN(终浓度为2.5、5、10和20μmol/L)和0.5、1、2和4μl Oligofectamine。12、 24、48和72h 后,用MTT法检测细胞活力,并绘制各组细胞的生长曲线。
1.2.4OligofectamineTM介导的寡核苷酸转染指数生长期GBCSD细胞,以5×103/ml细胞密度接种96孔板中。混合5μl Oligofectamine和10μl 20μM SODN或10μl 20μM ASODN,制备成无血清转染液,并加入细胞中,培养4h后,吸弃转染液,加入含小牛血清培养液继续培养,此时设为0h点。
1.2.5MTT法检测OligofectamineTM 介导VEGF寡核苷酸转染对GBCSD细胞增殖的影响OligofectamineTM介导的寡核苷酸转染如前所述。分别于转染后24、48、72和96h后,加入MTT (5mg/m1)20μl,37℃,5%CO2培养箱温育4h,小心吸去上层培养液,每孔加入200μl的二甲亚砜(DMSO)终止反应,在570nm波长下检测吸光度。以时间为横轴,光吸收值为纵轴,绘制细胞生长曲线并计算细胞生长的抑制率。
1.2.6流式细胞仪检测OligofectamineTM 介导VEGF寡核苷酸转染对GBCSD凋亡的影响OligofectamineTM介导的寡核苷酸转染如前所述。分别于转染后24、48、72和96h后,按照ANNEXINV/PI凋亡试剂盒操作说明,采用流式细胞仪进行检测。
1.3统计分析实验数据中计量资料以± s表示,多组资料的统计学检验采用方差分析,各组均数间的相互比较采用 StudentNewmankeuls法,所有统计学检验均采用统计学软件SPSS 11.0 进行,P<0.05为差异有统计学意义。
2结果
2.1MTT法测定SODN和OligofectamineTM对GBCSD细胞的毒性试验在12、 24、48和72h 4个作用时相点,对照组,2.5、5、10和20μmol/L SODN组及0.5、1、2和4μl oligofectamine组GBCSD细胞生长无明显差异(P>0.05),可见在试验浓度范围内,SODN和Oligofectamine对GBCSD细胞均未见明显毒性。
2.2MTT法检测OligofectamineTM 介导VEGF寡核苷酸转染对GBCSD细胞增殖的影响SODN组、SODN+Oligofectamine组和Oligofectamine组的细胞生长曲线与对照组基本平行,四组相比差异无统计学意义(P>0.05)。ASODN组及ASODN+Oligofectamine组与对照组相比较差异有统计学意义(P<0.05),且ASODN+Oligofectamine组GBCSD细胞的生长曲线比ASODN组低平,表明ASODN组及ASODN+Oligofectamine组的GBCSD细胞生长增殖均受到明显抑制,而SODN组、SODN+Oligofectamine组和Oligofectamine组的GBCSD细胞与对照组相比无明显差别,ASODN组的抑制增殖作用于培养24~48h左右最明显,抑制率在35%上下,在48h后抑制作用开始逐渐减弱,而ASODN+Oligofectamine组的抑制增殖作用比ASODN组更显著, 抑制率在24~96h内均达50%以上,显著高于ASODN组(P<0.05)。该结果表明,VEGF ASODN能抑制GBCSD细胞的增殖速率, 通过Oligofectamine介导转染,能增强VEGF ASODN转染对GBCSD细胞增殖的抑制作用。
各组对GBCSD细胞生长曲线的影响
VEGF ASODN和ASODN+Oligofectamine对GBCSD细胞生长的抑制率
*与ASODN组比较P<0.01
2.3流式细胞仪检测OligofectamineTM 介导VEGF寡核苷酸转染对GBCSD凋亡的影响图中左下象限为AnnexinV(-)PI(-): 无凋亡的活性细胞;右下象限为AnnexinV(+)PI(-): 早期凋亡细胞;右上象限为AnnexinV(+)PI(+): 晚期凋亡细胞、坏死或已死细胞。本检测结果显示Control组和SODN+Oligofectamine组24、48和72h细胞大部分为左下象限无凋亡的活性细胞 , 仅有少量为凋亡及死亡细胞。Control组的24、48和72h无凋亡活性细胞分别占95.20%、94.20%和94.43%, 凋亡及死亡细胞仅占3.86%、4.75%和4.83%, SODN+Oligofectamine组的24、48和72h无凋亡活性细胞分别占94.30%、93.63%和92.10%, 凋亡及死亡细胞仅占4.54%,5.46%和6.91%, Control组和SODN+Oligofectamine组之间无凋亡活性细胞和凋亡及死亡细胞差异均无统计学意义(P>0.05),说明24、48和72h Control组和SODN+Oligofectamine组GBCSD细胞均无明显的凋亡发生, 具有充分的活性。但ASODN+Oligofectamine组细胞凋亡及死亡细胞,在24、48和72h分别占24.73%,52.42%和65.09%,较Control组和SODN+Oligofectamine组有明显增加(P<0.05),而左下象限无凋亡的活性细胞分别占73.34%、46.93%和33.75%,则显著低于Control组和SODN+Oligofectamine组(P<0.05)。说明ASODN+Oligofectamin组细胞与Control组和SODN+Oligofectamine组细胞相比凋亡更为明显, 提示ASODN+Oligofectamin组能促进胆囊癌GBCSD细胞的凋亡。
各组GBCSD细胞凋亡情况
3讨论
针对癌基因、生长因子及其受体、信号传导通路等设计的ASODN已作为一种有希望的药物用于治疗癌症等 [6]。由于未经修饰的ASODN进人细胞内很快被降解,经修饰或载体结合后降解速度大为减慢,为此人们合成了许多具有核酸酶抗性的寡核苷酸类聚物,经过修饰的反义寡核苷酸, 抵抗核酸酶的消化能力大大提高, 从而提高了细胞内ASODN分子的浓度, 延长了反义寡核苷酸的有效作用时间,为此,在本研究所采用的寡核苷酸就是人工合成的全硫代修饰的SODN和ASODN。ASODN在实际应用时存在着细胞摄入率低的问题,单纯提高ASODN的用量,不仅增加了费用,而且可能会产生非特异性的毒副作用[7]。已证实阳离子脂质体可提高ASODN与细胞的结合能力,增强其生物学活性[89]。研究表明[10],在Iiposome介导下,血液循环中的ASODN至少在24 h内保持完整,而单纯ASODN 5 min后将不能被检测到。ASODN与脂质体结合后,主要集中在细胞核,而单纯的ASODN则主要位于胞浆中。结合改变了其在细胞内的分布,使ASODN在细胞核内的作用时间延长。阳离子脂质体(Cationic liposomes)能与带负电荷的核酸物质形成复合物,可提高细胞对ASODN的摄入,增加生物利用度,同时可在一定程度上降低核酸酶对其的降解 [1112], 如市售的Lipofectamine,它带阳离子,可以包裹带阴离子的寡核苷酸,转染效率也很高[1314]。在本实验中我们所使用的Oligofectamine是一种专门用于寡核苷酸转染的阳离子脂质体,其转染效率优于Lipofectamine[15]。从我们的实验结果显示,SODN和Oligofectamine对人胆囊癌细胞GBCSD的正常生长在实验浓度范围内没有任何毒性作用,在此基础上,通过MTT法测得的细胞生长曲线发现,ASODN组和ASODN+Oligofectamine组对人胆囊癌细胞GBCSD的生长有显著的抑制作用,而SODN组和SODN+Oligofectamine组则无作用,表明VEGF反义寡核苷酸能显著抑制人胆囊癌细胞GBCSD的增殖。而Oligofectamine包裹介导转染的ASODN组较直接转染的ASODN组抑制率明显提高,且作用有效时间延长,在96 h仍有显著抑制作用。流式细胞仪检测的检测结果说明ASODN+Oligofectamin组能促进胆囊癌GBCSD细胞的凋亡。可见VEGF ASODN能够阻断其在促进肿瘤新生血管生成通路的信号转导,能够抑制胆囊癌细胞GBCSD生长增殖,促进细胞凋亡,Oligofectamine作为一种专门用于寡核苷酸转染的阳离子脂质体,能显著提高VEGF ASODN抑制人胆囊癌细胞GBCSD的增殖效应,并且这种作用是序列特异性的,而不是脂质体本身的作用或非序列特异性效应。因此Oligofectamine可作为一种低毒载体应用于介导ASODN对胆囊癌的治疗。综上所述,VEGF ASODN能抑制胆囊癌GBCSD细胞的生长和增殖,Oligofectamine能明显增强VEGF ASODN的抑制效果。Oligofectamine+ASODN能促进胆囊癌GBCSD细胞的凋亡。
【参考文献】
[1]Varga LV,Toth S,Novak I,et al.Antisense strategies functions and applications in immunology[J]. Immunol Lett,1999,69(2):217224.
[2]Rizwan M, Jie C, Tong Z, et al. Vascular endothelial growth factor is an autocrine growth factor for VEGF receptorpositive human tumors[J]. Blood, 2001, 98(6): 19041913.
[3]颜子颖,王海林.精编分子生物学实验指南[M].第1版.北京:科学出版社.1998,286287,311312.
[4]Temsamani J, Guinot P. Antisense oligonucleotides: a new therapeutic approach[J].Biotechnol Appl Biochem, 1997, 26(2): 6571.
[5]Alama A, Barbieri F, Cagnoli M, et al. Antisense oligonucleotides as therapeutic agents[J]. Pharmcol Res, 1997,36(3): 171178.
[6]Akhtar S, Hghes MD, Khan A, et al. The delivery of antisense therapeutics[J]. Adv Drug Del Rev, 2000, 44(1): 321.
[7]Lin TJ, Lv LH, Chen ZZ. The toxic effects of highdose bcl2 antisense phosphorothioate oligodeoxynucleotides incubation on cell line[J]. Natl Med J China, 2000, 80(9): 694697.
[8]Geiger T, Muller M, Dean NM,et al. Antitumor activity of a PKCalpha antisense oligonucleotide in combination with standard chemotherapeutic agents against various human tumors transplanted into nude mice[J].AntiCancer Drug Des, 1998,13(1): 3545.
[9]Citro G, D'Agnano I, Leonetti C, et al. cmyc antisense oligodeoxynucleotides enhance the efficacy of cisplatin in melanoma chemotherapy in vitro and in nude mice[J].Cancer Res, 1998,58(2):283289.
[10]Gokhale PC, Soldatenkov V, Wang FH, et al. Antisense raf oligodeoxyribonucleotide is protected by liposomal encapsulation and inhibits Raf1 protein expression in vitro and in vivo: implication for gene therapy of radioresistant cancer[J].Gene Therapy, 1997, 4(9):12891299.
[11]Motomura S, Motoji T, Takanashi M, et al. Inhibition of Pglycoprotein and recovery of drug sensitivity of human acute leukemic blast cells by multidrug resistance gene (mdr1) antisense oligonucleotides[J].Blood, 1998,91(9): 31633171.
[12]Akhtar S, Hghes MD, Khan A, et al. The delivery of antisense therapeutics[J]. Adv Drug Del Rev, 2000, 44(1): 321.
[13]Chaumont CG, Seksek O, Grzybowska J, et al. Delivery systems for antisense oligonucleotides[J]. Phamacol Ther, 2000, 87(5): 255277.
[14]Arun S, Leaf H. Gene transfer in mammalian cells using liposomes as carriers[A]. Wolff JA. Gene Therapeutics: Methods Applications Direct Transfer[M]. Boston: Brikhauser, 1994.119142.
[15]Miller KJ, Das SK. Antisense oligonucleotides: strategies for delivery[J]. PSTT, 1998,1(9): 377386.