联合检测CK19和CEA在恶性胸腔积液诊断中的意义
发表时间：2010-05-20 浏览次数：470次
作者：詹忆波 作者单位：324400 浙江省龙游县人民医院内科
【关键词】 恶性胸腔积液
恶性胸腔积液的主要原因是恶性肿瘤转移、累及胸膜腔所致[1]。国内外曾有报道外周血细胞角蛋白19片段CK19的检测有助于肺部肿瘤的诊断[2]。作者采用酶联免疫吸附法(ELISA)检测胸液CK19、用时间分辨荧光法(TRF)检测胸液癌胚抗原(CEA)，观察联合检测对恶性胸腔积液诊断的价值。
1 资料与方法
1.1 一般资料
2002年6月至2006年8月，本院住院胸腔积液患者70例,抽胸水测定CK19和CEA。恶性胸水组42例，男24例，女18例，平均年龄56.2岁。原发疾病：肺鳞癌19例、肺腺癌 16例、肺小细胞癌7例。良性胸水组28例，男16例，女12例;平均年龄48.3岁。原发疾病：结核病18例、肺炎7例、肺心病充血性心力衰竭3例。恶性组病例由组织病理学和/或胸水脱落细胞学诊断证实，良性组病例由病理学或细胞学、影像学检查及临床随访证实。
1.2 方法
(1)CK19定量测定：用酶联免疫吸附法(ELISA)测定CK19。 CK19试剂盒由德国Boehringer Mannheim公司提供。阳性判断标准CK 19>10μg/L，取胸液标本，严格按药盒规范由专人检测。 (2)CEA测定：用时间分辨荧光法(TRF)测定CEA。试剂盒购于美国Mega Diagnostics公司，阳性判断标准CEA>5 μg/L，取胸液标本，严格按药盒规范由专人检测。
1.3 统计学处理
用SPSS 11.5统计软件分析，计量资料两组间比较用t检验;计数资料两组间比较用卡方检验或Fisher's精确检验，以P<0.05为显著性差异水平。
2 结果
2.1 良恶性胸液CK19和CEA水平的比较
癌性胸液组CK19和CEA明显高于良性对照组，组间差异具有显著性(P<0.01)，见表1。 表1 良恶性胸液CK19和CEA的水平 (略)
2.2 良恶性胸液CK19、CEA阳性率的比较
胸液CK19、CEA对于胸液的性质具有较好的鉴别作用，见表2。表2 良恶性胸液CK19、CEA阳性率的比较(略)
2.3 CK19、CEA对癌性胸液的诊断价值
见表3。 表3 CK19、CEA对癌性胸液的诊断价值(略)
3 讨论
由于胸水细胞学检查的阳性率平均为50%～60%， 因此临床工作中恶性胸腔积液的诊断令人感到棘手。闭式胸膜活检的诊断恶性胸腔积液的阳性率也仅在40～50%[3]， 因此肿瘤标记物在肺癌和癌性胸腔积液的诊断中的价值一直为人们所关注。
CK19是上皮细胞骨架的一种中间丝状物，主要分布在单层上皮细胞中，如支气管、肺泡上皮、肠上皮、胰管、胆囊、子宫内膜及输卵管上皮细胞等。这些细胞癌变时可释放CK19的可溶成分进入体液。引起恶性胸液的常见肿瘤，肺癌、乳腺癌、结肠癌等组织中CK19有较高表达[4]，因此可以在以上肿瘤引起的胸液中检测到CK19。CEA是一种糖蛋白，是癌组织和胎儿细胞的共有抗原。它在成人胃、肠、肺、乳腺等部位的癌症组织中均有表达[2]。
考虑到肿瘤细胞的异质性和引起胸液的肿瘤多样性;另外，肿瘤细胞进入体液可能是间断的[5]， 所以单一指标来判断胸液的性质有一定的局限性。本研究观察了CK19和CEA联合检测在恶性胸腔积液诊断中的意义。本结果表明 CK19与CEA单独检测对恶性胸腔积液诊断的敏感性分别为61.9%和54.8%，准确性67.1%。联合检测CK19与CEA可提高对恶性胸液诊断的敏感性和准确性至71.4%和72.9%。
综上所述，联合检测胸液CK19与 CEA在胸腔积液的鉴别诊断中具有重要价值。对于上述肿瘤标记物水平显著增高的患者，有条件可行闭式胸膜活检乃至胸腔镜下活检，以争取尽早取得病理学依据，明确诊断。
【参考文献】
1 孙青. 肿瘤的微转移及其检测. 国外医学肿瘤学分册,1998, 25: 279～281.
2 Giovanella L,Ceriani L, Piantanida R, et al. Immunoassay of neuron-specific enolase (NSE) and serum fragments of cytokeratin 19 (CYFRA 21.1) as tumor markers in small cell lung cancer: clinical evaluation and biological hypothesis.Int J Biol Markers. 1997， 12: 22～26.
3 徐峰，徐志豪，林小莉，等. 胸膜活检在不明原因胸腔积液中的诊断价值. 浙江医学，2003，25(7):417～418.
4 Kao RH, Huang LC. High false-positive rate of cytokeratin-19 in detecting circulating tumor cells for nasopharyngeal carcinoma. Chang Gung Med J, 2002, 25(4): 238～244 .
5 Masaki Mori, Koshi Mimori, Hiroaki Veo,et al. Molecular detection of circulating solid carcinoma cells in the peripheral blood: the concept of early systemic disease. Int J cancer，1996, 68(5)： 739～743.
