灵芝多糖对糖尿病大鼠肾组织MMP-2和TIMP-2表达的影响
发表时间:2010-07-26 浏览次数:567次
作者:李伟 毛春谱 殷寒秋 作者单位:徐州医学院附属医院内分泌科,徐州 江苏 221002
【摘要】 目的 观察基质金属蛋白酶-2(MMP-2)、基质金属蛋白酶抑制因子-2(TIMP-2)在糖尿病大鼠肾组织中的表达及灵芝多糖干预后的影响。方法 腹腔注射链脲佐菌素(STZ)诱导制备糖尿病大鼠模型,分组给予不同剂量灵芝多糖(GLP,100、200、400 mg/kg)进行治疗性灌胃。8 w后,免疫组化和RT-PCR方法检测各组大鼠肾皮质MMP-2、TIMP-2的表达。结果 糖尿病组大鼠肾小球MMP-2的表达较正常对照组明显减少,TIMP-2明显升高(P<0.01);灵芝多糖各组较糖尿病组MMP-2表达升高(P<0.01),TIMP-2表达减少(P<0.01)。结论 灵芝多糖通过调节MMP-2/TIMP-2的平衡,减少细胞外基质积聚,对糖尿病大鼠肾脏起保护作用。
【关键词】 灵芝多糖;糖尿病肾病;基质金属蛋白酶-2;基质金属蛋白酶抑制因子-2
基金项目:江苏省中医药局资助项目(H05102)
Effects of Ganoderma lucidum polysaccharides on the expression of matrix metalloproteinase-2/tissue inhibitor of metalloproteinase-2 in diabetic rat kidney
LI Wei,MAO Chun-Pu, YIN Han-Qiu.
Department of Endocrinology,Affiliated Hospital of Xuzhou Medical College,Xuzhou 221001,Jiangsu, China
【Abstract】 Objective To investigate the expressions of matrix metalloproteinase (MMP)-2 and tissue inhibitor of metalloproteinase (TIMP)-2 in the kidney of diabetic rats and the effects of Ganoderma lucidum polysaccharides on such changes.Methods 70 male Sprague-Dawley rats were divided randomly into control group (n=10),diabetes mellitus (DM) group (n=15) and three dosages (100, 200 and 400 mg/kg) of Ganoderma lucidum polysaccharides (GLP) treated diabetic groups (each group, n=15). Diabetic model was induced by intraperitoneal injection of streptozotocin (STZ) (60 mg/kg). The expressions of MMP-2 and TIMP-2 in kidney tissure were determined by immunohistochemistry and RT-PCR methods 8 weeks later. Results The expressions of protein and mRNA MMP-2 significantly reduced in glomeruli,while expressions TIMP-2 was increased in DM group(P<0.01) compared with those in control group. MMP-2 expression increased and TIMP-2 expression decreased in all dosages of GLP groups compared with those in DM group (P<0.01). Conclusions GLP has some renal protective effect on diabetic rats through decreasing excessive deposition of glomeruli extracellular matrix by regulating the bachance of MMP-2 and TIMP-2.
【Key words】 Ganoderma lucidum polysaccharides;Diabetic nephropathy;Matrix metalloproteinase-2;Tissue inhibitor of metalloproteinase-2
糖尿病肾病(Diabetic nephropathy,DN)是糖尿病患者致残致死的重要原因之一。目前防治DN的药物主要是以西药为主,且副作用较多。灵芝多糖(Ganoderma lucidumpolys accharides,GLP)是从灵芝中提取的有效活性成分,具有广泛的药理活性〔1〕,能调节机体的免疫力,抗肿瘤,抗辐射等作用。近年来研究表明GLP具有减少尿微量白蛋白(microalbuminuria,MAU)〔2〕、降低血脂(plasma fat,PF)〔3〕、消除机体内自由基和抗氧化〔4〕等作用,提示GLP对肾脏具有一定的保护作用。但是GLP是否能通过MMP-2 /TIMP-2的作用机制发挥肾脏保护作用,国内外未见报道。本研究采用免疫组化和RT-PCR方法的方法观察GLP不同剂量组对糖尿病大鼠肾组织的MMP-2和TIMP-2的表达变化,旨在探讨GLP对DN的作用机制。
1 材料与方法
1.1 材料 清洁级雄性SD大鼠70只,体重180~220 g(徐州医学院实验动物中心),STZ(美国Sigma公司),灵芝多糖(河北保定施达科生物工程技术有限公司,批号:RM051215)。一抗分别为兔抗大鼠 MMP-2、TIMP-2(武汉博士德生物工程有限公司)抗体,SP-6001试剂盒及DAB试剂盒 ( 北京中杉金桥生物技术有限公司),Total RNA提取试剂、RT-PCR 试剂盒(大连宝生生物有限公司),LEICA Qwin图像处理与分析系统(德国),罗氏血糖仪(上海罗氏公司),日立7600型全自动生化分析仪(日本日立公司)。
1.2 方法
1.2.1 模型的建立 将SD大鼠随机分为正常对照组(C组,n=10)、糖尿病组未治疗组(DM组,n=15)、灵芝多糖低剂量组(GL-1组,n=15)、灵芝多糖中剂量组(GL-2组,n=15)、灵芝多糖高剂量组(GL-3组,n=15),分笼饲养。DM组和GL-1、GL-2、GL-3组大鼠在禁食12 h后,于左下腹腔一次性注射STZ(溶于0.1 mmol/L柠檬酸缓冲液,pH4.4)60 mg/kg,72 h后,尾静脉采血测随机血糖≥16.7 mmol/L,持续3 d以上作为模型纳入本实验。C组仅予以等量柠檬酸缓冲液腹腔注射。60只大鼠经检测均造模成功。
1.2.2 给药方法 模型成立3 d后GL-1、GL-2、GL-3组分别给予灵芝多糖水溶液100、200、400 mg/kg剂量进行治疗性灌胃,C组和DM组用等体积生理盐水灌胃。所有大鼠实验期间自由饮水进食,不使用胰岛素及其他降糖药物。每隔1 w测量体重(BW)以调整用药量,实验过程中DM组死亡4只,GL-1组死亡4只,GL-2组死亡5只,GL-3组死亡2只,其中GL-2组2只撕咬致死,其余可能为酮症酸中毒所致。
1.2.3 标本收集 连续观察8 w后收集标本。代谢笼中收集24 h尿,离心保存于-20℃的冰箱待测尿微量白蛋白(MAU)。称量体重后,用10%水合氯醛麻醉,腹主动脉采血测血糖(BG)、糖化血红蛋白(GHbA1c)、尿素氮(BUN)、血肌酐(SCr)、总胆固醇(TC)、甘油三酯(TG)。用4℃冰冷生理盐水冲洗后摘除双肾,去包膜滤纸吸干血迹后称重左肾,左肾重(KW)和体重的比值作为肾脏指数(KI)的指标。左肾部分置于10%中性福尔马林中固定,用以光镜、免疫组织化学研究。右肾取皮质1 mm×1 mm×1 mm标本放入3%戊二醛中固定,留作电镜研究;余肾皮质置DEPC水处理过的EP管,液氮冻透后保存于-70℃的冰箱待测RT-PCR。
1.2.4 生化指标的测定 MAU采用胶体金双抗体夹心法检测,BG采用葡萄糖氧化酶法检测,GHbA1c采用亲和层析法检测,BUN、SCr、TC、TG由日立7600型全自动生化分析仪检测。
1.2.5 常规光镜检测 肾组织经10%福尔马林固定,常规脱水、包埋,切片厚4 μm,行HE染色和免疫组化。
1.2.6 透射电镜检测 肾皮质经固定,脱水,浸透,包埋,制备半薄及超薄切片,电镜观察。
1.2.7 免疫组化 采用SP二步法,石蜡切片厚4 μm后常规脱蜡至水,3%H2O2阻断内源性过氧化物酶后,微波加热暴露抗原,滴加一抗(1∶50),4℃冰箱过夜,PBS洗片后滴加二抗,37℃孵育1 h,DAB显色控制在3~5 min,复染、脱水、透明、封片。以吸光度值(OD)表示,显色强度用LEICA Qwin图像处理与分析系统进行分析,以每张切片随机取10个视野的肾小球进行半定量分析。
1.2.8 RT-PCR 由基因库分别查得大鼠MMP-2、TIMP-2及β-actin的mRNA核苷酸序列,PCR引物用Primer Premier引物设计软件设计,由上海生工生物工程技术服务有限公司合成。肾组织总RNA的提取采用二步提取法,RT-PCR反应严格按照产品说明进行,MMP-2引物:上游5′-TTCCCCCGCAAGCCCAAGTG-3′(634~653),下游5′-GAGAAAAGCGCAGCGGAGTGACG-3′(756~778),产物145 bp,Genbank 登记号( NM008610)。反应参数为:预变性94℃3 min,变性94℃45 s,退火62℃45 s,延伸72℃45 s,循环35轮,然后72℃延伸10 min,4℃终止;TIMP-2引物:上游5′-TGCAGCTGCTCCCCGGTGCAC-3′ (400~420),下游5′-TGCTGAAGAGGGGGCCGTGTAGAT-3′(586~609),产物210 bp,Genbank 登记号(NM011594)。反应参数为:预变性94℃3 min,变性94℃45s,退火64℃45s,延伸72℃45s,循环30轮,然后72℃延伸10 min,4℃终止。β-actin(与MMP-2、TIMP-2共扩增做内参照):上游5′-CAGAAGGACTCCTACGTG(226~243)-3′,下游5′-GCTCGGTCAGGATCTTCATG(648~667)-3′,产物442 bp,Genbank 登记号(NM031144)。取PCR扩增产物5 μl在1.5%琼脂糖中电泳,Imagemaster VDS 成像系统摄影存盘后应用计算机图像分析软件(TotallabV 1.01) 行灰度扫描分析。以目的基因与β-actin 的PCR产物条带灰度Volume之比作为反映目的基因mRNA水平的相对指标。
1.3 统计学处理 计量资料用x±s表示,应用SPSS13.0统计软件进行统计分析,组间比较采用单因素方差分析。
2 结果
2.1 一般情况 DM组大鼠在实验期间多饮、多尿、多食、体重减轻、毛色无光泽、生长发育迟缓等症状十分明显,GLP各组大鼠上述症状改善不明显。8 w时DM组于C组相比,BG、KI、GHbA1c、BUN、TC、BUN、MAU显著升高,而KW明显下降(P<0.01),TC各组差异无统计学意义,GLP各组治疗后BW增加,KI降低,TC、BUN、MAU指标明显改善,尤以GL-3组明显(P<0.01,P<0.05),但BG、GHbAlc、SCr、TG无显著差异,见表1。
2.2 形态学改变 DM组大鼠较C组系膜细胞显著增生,系膜基质增多,肾小动脉内膜增生,管壁增厚,毛细血管腔狭窄,GL各组较DM组上述病理改变有不同程度改善。见图1。
2.3 肾脏超微结构改变 透射电镜下显示C组肾小球毛细血管基底膜呈线性状,厚度均匀,足状突起排列有序,无足突融合,系膜基质不增多;DM组基底膜增厚显著增厚、不规律,并且可见上皮细胞的足突融合,系膜基质显著增多。上述病理改变在GLP各组有不同程度的改善(图2)。
表1 灵芝多糖对糖尿病大鼠BG、BW、KW、KI、GHbAlc、TC、TG、SCr、BUN、MAU的影响(略)
与C组比较:1)P<0.05,2)P<0.01;与DM组比较:3)P<0.05,4)P<0.01;与GL-1组比较:5)P<0.05,6)P<0.01;与GL-2组比较:7)P<0.05,8)P<0.01;下表同
2.4 免疫组化结果 免疫组化染色显示阳性颗粒主要定位于肾小球和肾小管,DM组较C相比MMP-2降低而TIMP-2升高(P<0.01);GLP各组较DM组相比MMP-2均升高而TIMP-2不同程度降低(P<0.01),见表2及图3。
2.5 RT-PCR结果 8 w时,与C组相比DM组MMP-2mRNA表达减少,而TIMP-2mRNA表达增多;与DM组相比GLP各组MMP-2mRNA表达升高而TIMP-2mRNA表达减少(P<0.01),见表2及图4。
表2 灵芝多糖对各组糖尿病大鼠MMP-2和TIMP-2表达的影响(略)
图1 肾小球形态学变化(HE,×400)(略)
图2 肾小球超微结构变化(略)
图3 肾皮质MMP-2/TIMP-2免疫组化表达变化(SP二步法,×400)(略)
1.GL-3组,2.GL-2组,3.GL-1组,4.DM组,5.C组,M.DNA marker
图4 MMP-2、TIMP-2和β-actin的RT-PCR产物(略)
3 讨论
DN的主要病理特征是基底膜增厚和系膜区细胞外基质(extracelluar matrix,ECM)堆积,逐渐导致肾小球硬化。ECM主要由Ⅳ型胶原、层黏连蛋白、纤维连接蛋白等组成,其积聚和降解的平衡失调是导致肾小球硬化的关键病理过程之一〔5〕。基质金属蛋白酶(matrix metalloproteinases,MMPs)是在降解ECM起着主要的作用。MMPs是含有金属离子锌的蛋白酶超基因家族,能降解除多糖以外的所有ECM的成分。按作用底物可将MMPs分为四类:胶原酶、白明胶酶、基质溶解酶、膜型MMPs。MMP-2属于白明胶酶,在肾小球系膜细胞、内皮细胞、成纤维细胞等均有表达,主要降解Ⅳ型胶原。其活性受特异性抑制因子TIMP-2影响〔6〕。MMP-2/TIMP-2之间的平衡在调节ECM的降解中起着重要的作用。
一般认为在高血糖状态下肾小球MMP-2的表达减少而TIMP-2的表达增加,近年来研究证明MMP-2/ TIMP-2的动态失衡机制可能是:(1)高血糖直接引起血管紧张素2(AngⅡ)上调,Ang Ⅱ对肾小球系膜细胞的作用由血管紧张素1受体(AT1)受体介导,从而影响MMP-2/TIMP-2的平衡〔7〕;(2)高血糖可通过上调转化生长因子β1(TGF-β1)来抑制MMP-2的表达和活性同时上调TIMP-2的表达〔8〕;(3)糖尿病时结缔组织生长因子(CTGF)表达增加抑制MMP-2活性而升高TIMP-2〔9〕;(4)胰岛素样生长因子1(IGF-1)的表达水平升高,可使MMP-2的活性下降〔10〕;(5)糖尿病病人肾小球MMP-2的基因表达下调也可使MMP-2的表达减少〔11〕。但另有报道MMP-2的表达在糖尿病时是升高〔12〕和活性下降〔13〕。
本实验结果表明GLP对STZ诱导的糖尿病大鼠模型作用8 w后,肾小球MMP-2表达上调而TIMP-2的表达下调,同时MAU、KI、TC、BUN生化指标明显好转,电镜下基底膜增厚、系膜区增生和上皮细胞的足突融合等病变得到不同程度的改善,呈剂量依赖趋势,但对BG、GHbA1c、SCr、TG无明显作用。实验显示GLP可能是通过上调MMP-2和下调TIMP-2的表达来调节ECM的降解和合成达到对肾脏的保护作用,这种保护作用是独立于血糖之外的。此外GLP具有降低TC和减轻MAU的作用,减轻脂毒性和尿微量白蛋白对肾脏的损害而达到对肾脏的保护作用。
【参考文献】
1 林志彬.灵芝的现代研究〔M〕.北京:北京医科大学出版社,2001:219.
2 王 尧,石凤英.灵芝对大鼠糖尿病肾病的保护作用〔J〕.中国糖尿病杂志,2003;5(11):327-31.
3 Chen WQ,Luo SH,LI HZ,et al.Effects of ganoderma licidum polysaccharides on serum lipids and lipoperoxidation in experimental hyperlipidemic rats〔J〕.Zhongguo Zhong Yao Za Zhi,2005;30(17):1358-60.
4 王 黎,杨红梅,陈 洁,等.灵芝多糖对顺铂致大鼠肾损伤保护作用的实验研究〔J〕.中成药,2003;12(12):990-3.
5 Lenz O,Elliot SJ,Stetler-Stevenson WG.Matrix metalloproteinases in renal development and disease〔J〕.J Am Soc Nephrol,2000;11(3):574-81.
6 Sec DW,Li H,Guedez L,et al.TIMP-2 mediated inhibition of angiogenesis:an MMP-independent mechanism〔J〕.Cell,2003;114(2):171.
7 Han SY,Jee YH,Han KH,et al.An imbalance between matrix metalloproteinase-2 and tissue inhibitor of matrix metalloproteinase-2 contributes to the development of early diabetic nephropathy〔J〕.Nephrol Dial Transplant,2006;21(9):2406-16.
8 Singh R,Song RH,Alavi N,et al.High glucose decreases matrix metalloproteinase-2 activity in rat mesangial cells via transforming growth factor-beta1〔J〕.Exp Nephrol,2001;9(4):249-57.
9 Song Y,Li C,Cai L,et al.Fluvastatin prevents nephropathy likely through suppression of connective tissue growth factor-mediated extracellular matrix accumulation〔J〕.Exp Mol Pathol,2004;76(1):66-75.
10 Lupia E,Elliot SJ,Lenz O,et al.IGF-1 decreases collagen degradation in diabetic NOD mesangial cells:implications for diabetic nephropathy〔J〕.Diabetes,1999;48(8):1638-44.
11 Del Prete D,Anglani F,Forino M,et al.Down-regulation of glomerular matrix metalloproteinase-2 gene in human NIDDM〔J〕.Diabetologia ,1997;40(12):1449-54.
12 Rodriguez WE,Tyagi N,Joshua IG,et al.Pioglitazone mitigates renal glomerular vascular changes in high-fat,high-calorie-induced type 2 diabetes mellitus〔J〕.Am J Physiol Renal Physiol,2006;291(3):F694-701.
13 McLennan SV,Kelly DJ,Cox AJ,et al.Decreased matrix degradation in diabetic nephropathy:effects of ACE inhibition on the expression and activities of matrix metalloproteinases〔J〕.Diabetologia,2002;45(2): 268-75.