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《消化病学》

PPARα在老年大鼠酒精性肝损伤脂质过氧化中的作用

发表时间:2010-07-01  浏览次数:361次

  作者:孙龙 张填 杨世忠 作者单位:海南医学院附属医院消化内科,海南 海口 570102

  【摘要】目的 探讨过氧化物酶体增殖物激活受体α(PPARα) 在老年酒精性肝损伤中的作用。方法 将60只Wistar老年大鼠随机分为5组:对照组1组、观察组4组(包括4 w组、8 w组、12 w组和16 w组)。参照相关文献,观察组各组大鼠用白酒灌胃法复制酒精性肝损伤动物模型,分别于开始造模后的第4、8、12、16周时处死各组动物,采用RTPCR法检测肝组织中PPARα的表达,并检测脂质过氧化指标(血清FFA水平、肝组织中MDA含量及SOD活力)变化,分析PPARα的表达与其他各项指标的相关性。结果 与正常组比较,观察组各组大鼠PPARα的表达受抑制,随造模时间的延长,其表达水平逐渐降低,特别是在12、16 w时更为明显(P<0.05,P<0.01);而血清FFA水平、肝组织中MDA含量逐渐升高,肝组织中SOD活力逐渐降低。相关性分析表明,PPARα的表达与血清FFA水平、肝组织中MDA含量之间存在一定的效应关系,呈负相关,而与肝组织中SOD活力呈正相关。结论 PPARα与脂质过氧化关系密切,在老年酒精性肝损伤的发病机制中具有重要作用。

  【关键词】 酒精性肝损伤;过氧化物酶体增殖物激活受体α;脂质过氧化

  过氧化物酶体增殖物激活受体(peroxisome proliferator activated receptors,PPARs)属调节目标基因表达的核内受体转录因子超家族成员,活化后具有多种生物学效应〔1〕。近年来研究发现,作为PPARs的亚型之一,PPARα具有调节脂肪代谢、炎症反应、免疫功能、细胞分化等作用,与多种肝脏疾病关系密切。笔者在以往动物实验中初步证实PPARα在酒精性肝损伤中表达受抑制,其基因表达水平与NFκB(P65亚型)的表达、血清TNFα及IL6水平呈负相关,提示PPARα在酒精性肝损伤炎症反应中具有重要作用〔1〕。本实验拟采用RTPCR法观察PPARα在老年大鼠酒精性肝损伤中的表达变化及其与脂质过氧化的关系,进一步探讨PPARα在酒精性肝损伤中的意义。

  1 材料与方法

  1.1 实验动物分组

  健康老年Wistar雄性大鼠(22月龄)60只,随机分为5组:对照组1组,观察组1~4组,每组12只。观察组根据造模时间的不同分为4、8、12、16 w组。实验期间各组大鼠均予以饮用水及全价营养颗粒饲料喂养。

  1.2 动物模型建立

  大鼠经适应性喂养1 w后,观察组参照相关文献造模〔2〕:用红星牌二锅头白酒(北京酿酒总厂生产,约为10.2 mmol/L酒精溶液),以1.5 ml/100 g体重的剂量灌胃1次/d,分别连续灌胃4、8、12、16 w。对照组以等剂量的0.9%氯化钠溶液灌胃1次/d。

  1.3 标本制备

  各组大鼠分别于造模4、8、12、16 w末,禁食12 h,水合氯醛麻醉动物,下腔静脉采血,分离血清,用于检测血清游离脂肪酸(FFA);并于肝右叶取部分新鲜肝组织在4℃下制成肝组织匀浆,经高速离心后取其上清液,用于检测肝组织中丙二醛(MDA)含量及超氧化物歧化酶(SOD)活力;另一部分经液氮速冻,-80℃冰箱保存,以提取总RNA,用于RTPCR方法检测PPARα mRNA表达情况。

  1.4 血清FFA水平测定

  采用比色法测定血清FFA水平,严格按照FFA测试试剂盒(南京建成生物工程公司提供)说明进行操作。

  1.5 MDA含量、SOD活力测定

  取制备好的肝组织匀浆,严格按照MDA、SOD测试试剂盒(南京建成生物工程公司提供)说明进行操作。

  1.6 RTPCR

  总RNA提取试剂盒(美国BBI公司产品);RTPCR 试剂盒(日本TaKaRa Biotech公司产品);PCR引物经Primer5.0软件设计,由沈阳联星生物技术有限公司合成并纯化,见表1。表1 目的基因引物序列及反应条件(略)

  肝组织总RNA严格按照总RNA提取试剂盒操作说明进行提取,变性琼脂糖电泳法检测RNA的完整性,以随机引物逆转录合成cDNA,-80℃冰箱保存备用。

  根据RTPCR试剂盒要求加入相应成分,构成反应体系。将反应体系放于RTPCR仪中进行扩增反应,RTPCR反应参数:94℃预变性10 s,然后94℃变性15 s,62℃退火及聚合1 min,共45个循环。在每个循环进行到62℃时进行荧光定量检测。反应完毕后,采用2%琼脂糖电泳检测产物的单一性。每组实验至少平行重复2~3次。选取2~6循环作为基线范围,值为0.8时作为阈值,得到各个RTPCR扩增反应的CT值,最后采用△△CT法计算公式得到观察组各组与正常组之间mRNA表达量的相对比值。

  相对含量%=2-△△CT

  △△CT=△CT待测样品-△CT对照样品

  1.7 统计学处理

  采用SPSS12.0统计软件包,计量资料组间比较采用q检验,相关性采用直线回归分析。

  2 结 果

  2.1 一般状况

  实验过程中,观察组大鼠因灌胃误入气管或胃穿孔(经解剖证实)共死亡10只,其中4、8 w组各死亡2只, 12、16 w组各死亡3只,对照组无大鼠死亡,经统计学分析,各组之间无显著性差异(P>0.05),具有可比性。

  2.2 血清FFA水平及肝脏MDA、SOD变化

  随造模时间延长,观察组大鼠血清FFA水平呈进行性升高,与对照组比较差异有统计学意义(P<0.05或P<0.01)。随造模时间延长,观察组大鼠肝组织中MDA含量呈进行性升高,而SOD活力呈进行性下降,与对照组比较差异均有统计学意义(P<0.05或P<0.01)。见表2。表2 各组大鼠血清FFA水平及肝组织MDA含量、SOD活力比较(略)

  2.3 RTPCR结果

  RTPCR反应的融解曲线表明引物特异性良好;扩增反应的扩增曲线表明扩增反应良好。见图1、图2。

  2.4 各组大鼠肝脏组织中PPARα mRNA表达

  见表3。随造模时间的延长,观察组各组大鼠肝组织中PPARα的基因表达(相对比值)逐渐减弱,与对照组比较差异有统计学意义(P<0.05或P<0.01),其中造模12、16 w更为明显(P<0.01)。表3 各组大鼠肝组织中PPARα的基因表达(略)

  2.5 PPARα的基因表达与FFA水平、MDA含量、SOD活力的相关性分析

  见表4。观察组中各组大鼠PPARα的基因表达与血清FFA水平之间均存在良好的效应关系,呈负相关。观察组中各组大鼠PPARα的基因表达与肝组织中MDA含量之间均存在良好的效应关系,呈负相关;而PPARα的基因表达与肝组织中SOD活力呈正相关。表4 PPARα的基因表达与血清FFA水平相关性分析(略)

  3 讨 论

  酒精性肝损伤的致病因素单一明确,即长期大量的酒精摄入,但发病机制较为复杂,可能与酒精及其代谢产物的毒性作用、氧化应激、免疫介导和细胞因子、细胞凋亡、内毒素等多种因素有关〔3〕。目前,氧化应激与脂质过氧化在酒精性肝损伤发病机制中的作用备受关注,是酒精诱导肝细胞损伤的主要作用机制之一〔4,5〕。酒精在肝细胞内可通过细胞色素CYP4502E1并在铁离子参与下产生氧化作用,生成大量自由基,激活磷脂酶及脂质过氧化反应,降低膜磷脂,改变其通透性和流动性,从而改变与膜结合的酶、受体和离子通道的微环境,影响其功能〔6〕。此外,脂质过氧化还可以影响DNA和蛋白质的结构及功能〔7〕。近年来研究证实,PPARα表达减少可以使肝脏中脂质的利用和脂肪酸的氧化均发生障碍,导致肝脏内脂肪蓄积〔8〕。酒精可以使大鼠肝脏出现脂肪变性和炎症反应,同时PPARα所调控的肝脂肪酸结合蛋白基因表达下降,而PPARα激动剂可以改善脂肪变性、逆转炎症、上调相关基因的表达〔9〕。提示PPARα的表达与氧化应激及脂质过氧化关系密切,在酒精性肝损伤中具有重要作用。

  本实验发现随造模时间的延长,血清FFA水平、肝组织中MDA含量逐渐升高,而肝组织中SOD活力逐渐减弱,进一步证实氧化应激与脂质过氧化在酒精性肝损伤中具有重要作用,与其他学者研究结论相一致〔4,5〕。同时,经RTPCR方法证实PPARα在酒精性肝损伤中表达受抑,随造模时间延长其表达水平进行性降低,且表达水平与血清FFA水平、肝组织中MDA含量呈负相关,与肝组织中SOD活力呈正相关。结合以往实验研究结论,笔者认为氧化应激与脂质过氧化在酒精性肝损伤中具有重要作用,特别在老年性酒精性肝损伤中其作用更为明显。同时,PPARα参与了酒精性肝损伤,并在其病理过程中具有重要作用。PPARα的表达受抑,不仅可以使NFκB活化,启动多种炎性细胞因子的过量表达,放大炎症反应,促进酒精性肝损伤的发生和发展〔1〕;同时,也可能引起一系列与肝内脂肪酸代谢有关的蛋白质、酶基因的转录水平降低,使脂肪酸在肝脏内的氧化减少,脂蛋白合成代谢障碍,肝细胞内出现脂肪沉积及炎症反应,从而导致酒精性肝损伤的发生和发展。但PPARα参与氧化应激及脂质过氧化确切的作用途径、机制尚未完全明确,有待于进一步研究。

  【参考文献】

  1 孙 龙,迟宝荣,杨世忠,等.过氧化物酶体增殖物激活受体α在实验性大鼠酒精性肝损伤中的表达〔J〕.中华消化杂志,2007;27(4):2745.

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  5 Wu D,Cederbaum AI.Alcohol,oxidative stress,and free radical damage〔J〕.Alcohol Res Health,2003;27(4):27784.

  6 Jones BE,Liu H,Lo CR,et al.Cytochrome P4502E1 expression induces hepatocyte resistance to cell death from oxidative stress〔J〕.Antioxid Redox Signal,2002;4(5):701.

  7 Loguercio C,Federico A.Oxidative stress in viraland alcoholic hepatitis〔J〕.Free Radic Biol Med,2003;34(1):1.

  8 戚晓红,张昭萍,李晓宇,等.过氧化物酶体增殖物激活受体在实验性大鼠脂肪肝中的表达〔J〕.中国病理生理杂志,2003;19(9):12069.

  9 Nanji AA,Dannenberg AJ,Jokelainen K,et al.Alcoholic liver injury in the rat is associated with reduced expression of Peroxisome proliferator alpha (PPAR alpha) regulated genes and is ameliorated by PPAR alpha activation〔J〕.J Pharmacol Exp Ther,2004;310(1):41724.

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