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《外科学其他》

EphrinA1基因小干扰RNA的构建及其在Huh-7细胞中的沉默效应

发表时间:2010-05-05  浏览次数:425次

  作者:王怡,陈钢,陈必成,刘佳明,黄陈平 作者单位:1.温州医学院 环境与公共卫生学院,浙江 温州 325035;2.温州医学院附属第一医院 肝胆外科,浙江 温州 325027

  【摘要】 目的 :构建针对EphrinA1基因的发夹状RNA(ShRNA)表达载体pSilencer2.1-EphrinA1-SiRNA,观察其对人肝癌细胞Huh-7中EphrinA1基因表达的特异性抑制效应。方法 :设计合成针对EphrinA1 mRNA的RNAi核苷酸片段,并定向克隆到pSilencer2.1-U6载体中,构建重组质粒pSilencer2.1-EphrinA1- SiRNA,同时构建不针对任何序列的重组质粒pSilencer2.1-EphrinA1-ScrRNA,通过脂质体介导转染入Huh-7细胞,应用逆转录聚合酶链反应检测小干扰RNA的沉默效应。结果:酶切鉴定证实pSilencer2.1-EphrinA1-SiRNA和pSilencer2.1-EphrinA1-ScrRNA重组质粒构建成功,转染Huh-7细胞后,pSilencer2.1-EphrinA1-SiRNA组EphrinA1 mRNA表达较pSilencer2.1-EphrinA1-ScrRNA组和空白对照组明显下调,差异有统计学意义(P<0.05)。结论:pSilencer2.1-EphrinA1-SiRNA载体的成功构建为下一步研究以EphrinA1基因为靶位点的肝细胞癌基因治疗奠定了重要的实验基础。

  【关键词】 EphrinA1;小干扰RNA;肝细胞癌

  Construction of EphrinA1 SiRNA and analysis of its silenced effect in hepatoma cell line

  Huh-7 WANG Yi, CHEN Gang, CHEN Bi-cheng, LIU Jia-ming, HUANG Chen-ping.

  Environmental Science and Public Health School,Wenzhou Medical College,Wenzhou,325035

  Abstract: Objective: To observe the inhibition effect of ShRNA on EphrinA1 expression in hepatoma cell line Huh-7 through construction of the expressed carrier pSilencer2.1-EphrinA1-ScrRNA of EphrinAI. Methods: Two pairs of SiRNA were designed and synthesized according to the EphrinA1 mRNA sequence in GenBank,and then were inserted into pSilencer2.1-U6 plasmids to create recombinant plasmids pSilencer2.1-EphrinA1-SiRNA and pSilencer2.1-EphrinA1-ScrRNA (control). After being transfected into Huh-7 cells,EphrinA1 expressed by ShRNAs was detected to be down regulated by RT-PCR. Results: All plasmids were constructed successfully. Expression of EphrinA1 in Huh-7 cells infected with pSilencer2.1-EphrinA1-SiRNA plasmids was significantly down regulated compared with that is infected with pSilencer2.1-EphrinA1-ScrRNA plasmids (P<0.05). Conclusion: Con-struction of pSilencer2.1-EphrinA1-SiRNA lays an important experimental foundation for gene therapy of hepatocellular carcinoma (HCC) by targeting the EphrinA1 gene.

  Key words: EphrinA1;SiRNA;HCC

  受体酪氨酸激酶已经被公认为血管生成的重要信号分子,Ephrin配体及其受体Eph是其中最大的一个亚家族,其在肿瘤血管生成中的作用受到越来越多的关注[1]。近期有日本学者用cDNA微列阵分析显示EphrinA1在AFP相关的肝细胞癌中是最多过度表达的基因[2]。我们的前期研究也表明,在人肝癌组织切片中EphrinA1蛋白的表达明显增高并与其血管生成明显相关;EphrinA1的高表达与肿瘤的转移侵袭能力密切相关[3]。本实验拟构建靶向EphrinA1基因的RNA干扰重组体,通过沉默Huh-7肝癌细胞中EphrinA1基因的表达,以期为下一步探讨EphrinA1基因在肝细胞癌发生、发展及血管生成中的作用提供有力支持。

  1 材料和方法

  1.1 材料

  Huh-7肝癌细胞株由湖南湘雅中心实验室提供;质粒pSilencer2.1-U6购自美国Ambion公司;T4连接酶及各种限制性核酸内切酶均购自美国Promega公司;脂质体Lipofectamine

  2000购自美国Invitrogen公司;质粒提取试剂盒、逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)试剂盒购自TaKaRa公司;RT-PCR引物由上海生工合成。

  1.2 EphrinA1-siRNA转录模板的发夹结构设计

  将EphrinA1的mRNA全序列(GenBank NM_ 004428)输入到SiRNA Sepuence Selector中,筛选出一个19 nt的靶序列,阴性对照将SiRNA片段顺序打乱。SiRNA靶序列为5’-ACCACAGGCAT

  AAGCTATC-3’,Scramble SiRNA靶序列为 5’-CA CACCATAATAAGGGTCC-3’。然后用SiRNA Hairpin Oligonucleotide Sequence Designer 软件设计成能与pSilencer2.1载体相连接的双链发夹结构。

  序列结构为BamHI+sense+loop+antisense+终止信号+SalI+Hind III。

  实验组DNA模板序列为:

  5’-ACCACACCACAGGCATAAGCTATCTTCAAGAG AGATAGCTTATGCCTGTG GTTTTGCAATTCACAGCTT-3’

  3’-TGGTGTGGTGTCCGTATTCGATAGAAGTTCT CTCTATCGAATACGGACACCAAAACGTTAAGTGTCGAA-5’

  阴性对照组DNA模板序列为:

  5’-ACCACACCACGAGCATAAGCTATCTTCAAGAG AGATAGCTTATGCTCGTGGTTTTGCAATTCACAGCTT-3’

  3’-TGGTGTGGTCTGCGTATTCGATAGAAGTTCTC TCTATCGAATACGGCCACAAAAACGTTAAGTGTCGAA-5’

  交由上海博亚公司合成。

  1.3 插入片段的退火和连接

  将合成的寡核苷酸链溶解在ddH2O中,各取1μL正义和反义寡核苷酸链溶液,再加入48μL退火缓冲液,充分混匀,配制成50μL溶液,在PCR仪上95 ℃孵育4 min,70 ℃孵育10 min,缓慢冷却至4 ℃;以Hind III,BamH I双酶切pSilencer2.1-U6质粒,使载体线性化,取退火后的插入片段溶液1μL+线性化pSilencer2.1-U6质粒5μL+T4连接酶2μL+T4连接酶缓冲液2μL在4 ℃下过夜。分别命名为pSilencer2.1-EphrinA1-SiRNA和pSilencer2.1-EphrinA1-ScrRNA。

  1.4 重组质粒转化宿主菌以及质粒的提取和鉴定

  以常规方法制备并转染感受态宿主菌DH5α,质粒的提取则按产品说明书进行,最后提取的质粒DNA,经Sal I和EcoR I双酶切鉴定。

  1.5 质粒转染

  采用Lipofectamine2000脂质体介导的转染法。在转染前一天,换液后调整Huh-7细胞密度为2×105/mL,以每孔2 mL接种于6孔板,待细胞增至80%融合时,将质粒、脂质体按体积比1:6混合后转染至细胞中,操作按照说明书进行。

  1.6 细胞内总RNA的提取及RT-PCR

  采用Trizol一步法提取总RNA;逆转录得到cDNA后行PCR反应;EphrinA1:正义5’-AACAAGCTGTGCAGGCATGG-3’,反义5’-CTCCACAGATGAGGTCTTG C-3’,产物230 bp;GAPDH引物(产物315 bp):正义5’-GTCAACGGATTTGG TCTGTATT-3’,反义5’- AGTCTTCTGGGTGGCAGTGAT-3’; 扩增条件:95 ℃预变性5 min,94 ℃变性50 s,49 ℃退火45 s,72 ℃延伸50 s,28个循环,72 ℃延伸10 min,4 ℃降温。结果观察PCR产物经2%琼脂凝胶电泳,EB染色检测,用凝胶成像分析系统(英国UVP公司GDS8000)对DNA条带扫描,并分析结果。

  1.7 统计学处理方法

  采用方差分析。

  2 结果

  2.1 pSilencer2.1-EphrinA1-SiRNA和pSilencer2.1-EphrinA1-ScrRNA质粒酶切鉴定

  根据pSilencer2.1U6载体的限制性内切酶图谱,质粒载体中无Sal I的酶切位点,而在我们的插入序列里面加入了Sal I的酶切位点,其酶切点在793 bp位置,质粒本身在397 bp处有单一的EcoR I位点,双链寡核苷酸片段则插在BamH I和Hind III中间,因此pSilencer2.1-EphrinA1-SiRNA和pSilencer2.1-EphrinA1-ScrRNA重组质粒均可用EcoR I和Sal I双酶切进行鉴定。两重组质粒双酶切后均可切出大小为456 bp的DNA片段,电泳结果与预期结果一致(见图1)。

  2.2 重组质粒的沉默效应

  RT-PCR结果显示:转染48 h后pSilencer2.1-EphrinA1-SiRNA组的EphrinA1 mRNA表达水平较pSilencer2.1-EphrinA1-ScrRNA组和空白对照组明显下调,三者的灰度比值分别为0.18±0.15、0.61±0.18和0.74±0.21,前者的灰度比值与后二者相比均明显降低,其差异均有显著性(P<0.05),而后二者灰度比值差异无显著性(P>0.05)。

  3 讨论

  RNA干扰现象(RNA interference,RNAi),是由双链RNA介导的,在转录后水平关闭相应的基因序列表达的过程,也就是序列特异性的转录后基因沉默。它由Fire于1998年在秀丽隐杆线虫的研究中首先发现并报道[4]。用RNAi技术可以高效、特异、快速地抑制细胞内癌基因的表达,使癌症表型逆转或病程得以控制。和其他基因干预技术相比,RNAi具有两个明显的特征:抑制基因表达的高效性和高度的基因序列特异性——这为我们进行人肿瘤细胞的RNAi抑制特异基因表达的研究提供了理论基础[5]。

  血管生成是实体瘤生长的基础,又是转移的重要途径。肝细胞癌为典型的多血管型肿瘤,故抗血管生成治疗具有重要意义。Eph/Ephrin是新近发现的受体酪氨酸激酶家族成员,其在肿瘤血管生成中的作用已经受到广泛的关注。研究证实EphrinA1可通过与其受体结合,激活下游的信号传导通路,从而调控内皮细胞的激活、黏附、转移以及渗透,最终影响如乳腺癌[6]、结肠癌[7]、胃癌[8]、卵巢癌[9]等多种肿瘤的血管生成。同时针对Eph/Ephrin系统的抗肿瘤及抗血管生成基因治疗均显示出巨大的潜力[10]。我们的前期研究表明在人肝癌组织切片中EphrinA1的表达明显增高并与其血管生成明显相关;EphrinA1的高表达与肿瘤的转移侵袭能力密切相关[3]。

  在本实验中我们成功地构建了针对EphrinA1基因的RNAi序列,并克隆至载体pSilencer2.1-U6中,下一步我们将进一步检测EphrinA1基因沉默后对人肝癌细胞Huh-7生物学行为的影响,以探讨EphrinA1基因在肝细胞癌发生、发展及血管生成中的作用,以期能为临床上肝细胞癌的治疗提供新的靶点。

  【参考文献】

  [1]Gale NW, Yancopoulos GD. Growth factors acting via en-dothelial cell-specific receptor tyrosine kinases:VEGFs,angiopoietins, and ephrins in vascular development[J]. GenesDev,1999,13(9):1055-1066.

  [2]Iida H, Honda M, Kawai HF, et al. Ephrin-A1 expressioncontributes to the malignant characteristics of a-fetopro-tein producing hepatocellular carcinoma[J]. GUT, 2005, 53(6):843-851.

  [3]陈钢, 王怡, 易继林, 等. 肝细胞癌中Ephrin-A1及其受体的表达与血管生成的关系[J]. 中国普通外科杂志, 2007, 16(8):778-782.

  [4]Fire A, Xu S, Montgomery MK, et al. Potent and specificgenetic interference by double-stranded RNA inCaenorhabditis elegans [J]. Nature, 1998, 391(6669): 806-811.

  [5]Elbashir SM, Harborth J, Lendeckel W, et al. Duplexes of21-nucleotide RNAs mediate RNA interference in culturedmammalian cells [J]. Nature, 2001, 411(6836):494-498.

  [6]Zelinski DP, Zantek ND, Stewart JC, et al. EphA2overexpression causes tumorigenesis of mammary epithe-lial cells [J]. Cancer Res, 2001, 61(5):2301-2306.

  [7]Lyka P, ErwinR B, Douglas A, et al. Reduced expression ofEphrinA1 (EFNA1) inhibits three dimensional growth ofHT29 colon carcinoma cells [J]. Cancer Let, 2002, 175(2):187-195.

  [8]Nakamura R, Kataoka H, Sato N, et al. EPHA2/EFNA1expression in human gastric cancer[J]. Cancer Sci, 2005, 96(1):42-47.

  [9]Thaker PH, Deavers M, Celestino J, et al. EphA2 expres-sion is associated with aggressive features in ovarian carci-noma [J]. Clin Cancer Res, 2004, 10(15):5145-5150.

  [10]Cheng N, Brantley DM, Chen J. The ephrins and Eph recep-tors in angiogenesis [J]. Cytokine Growth Factor Rev, 2002,13(1):75-85.

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