顺/逆行同时心肌灌注对于细胞容量和能量代谢影响的研究
发表时间:2009-06-27 浏览次数:720次
作者:李刚,田伟忱,及亚男
作者单位:1.哈尔滨医科大学附属第二医院心脏外科,黑龙江 哈尔滨 150086; 2.Institute for Biodiagnostics, National Research Council Canada, Winnipeg, Canada R3B1Y6
【摘要】 目的 应用磁共振图谱动态研究顺/逆行同时心肌灌注对于细胞容量和能量代谢的影响。方法 由10个离体猪心的主动脉和冠状静脉窦同时灌注温血停跳液2小时期间,应用近红外线图谱动态监测心肌含水量的变化,并且联合使用磷31(31P)磁共振图谱和特异性细胞间隙标记物动态观察细胞内、外容量和心肌能量代谢的变化。结果 近红外线图谱显示顺/逆行同时灌注期间的心肌含水量明显增高至其初始值的(160±12)%。水肿期间的31P磁共振图谱显示了顺/逆行同时灌注导致细胞内、外间隙标志物的含量均明显增高。通过计算可知,细胞内、外容量分别增长至其各自初始值的(136±4)%和(154±8)%。但是,顺/逆行同时灌注2小时期间的心肌能量代谢情况基本保持不变。结论 2小时顺/逆行同时灌注导致细胞内、外容量均明显升高,但是水肿心肌在此期间能够维持正常能量代谢。
【关键词】 磁共振 图谱 心肌灌注 心肌水肿 能量代谢 灌注
Effects of Simultaneous Antegrade/Retrograde Cardioplegia on
Cellular Volumes and Energy Metabolism
LI Gang1,TIAN Wei-chen1,JI Ya-nan1,LI Song-mei1,JIANG Shu-lin1,TIAN Gang-hong2
(1.Department of Cardiac Surgery, the Second Affiliated Hospital, Haerbin Medical University,
Heilongjiang Haerbin 150086,China; 2.Institute for Biodiagnostics,
National Research Council Canada, Winnipeg, Manitoba R3B 1Y6, Canada)
Abstract: OBJECTIVE To assess the effects of simultaneous antegrade/retrograde cardioplegia (SARC) on cellular volumes and energy metabolism using magnetic resonance spectroscopy. METHODS Ten isolated pig hearts were perfused for 2 hours through aorta and coronary sinus simultaneously with blood cardioplegia. Myocardial water content was monitored continuously throughout SARC using near infrared (NIR) spectroscopy. Phosphorus-31 magnetic resonance spectroscopy (31P MRS) in conjuction with 31P MRS-detectable markers, dimethyl methylphosphonate (DMMP) and phenylphosphonate (PPA), were used to follow the volumes of both intra- and extracellular compartments and to assess myocardial energy metabolism during SARC. DMMP distributes to the entire water space while PPA accesses only to the extra-cellular compartment. RESULTS NIR spectra showed a significant increase (160±12% to the initial value 100%) in water content during SARC, indicating tissue edema.31P MR spectra obtained during SARC showed a gradual and significant increase in both DMMP and PPA peaks. At the end of 2-hour SARC, the intra- and extra-cellular compartments increased to 136±4% and 154±8%, respectively, relative to their initial volumes (100%). However, myocardial energy metabolites remained relatively unchanged during 2-hour SARC. CONCLUSION 2-hour SARC results in severe expansion of both intra- and extra-cellular compartments. Edematous myocardium can maintain normal energy metabolism during 2-hour SARC.
Key words: Magnetic resonance;Spectroscopy;Cardioplegia;Myocardial Edema;Energy Metabolism;Perfusion
理想的心肌保护应该向心脏的各个部分均提供充足灌注[1-2]。单纯顺行或逆行灌注都存在着灌注不均匀的缺陷,因此人们建议将两种方式结合起来,进行顺/逆行同时灌注(SARC)[3-5]。但是SARC能否引起组织水肿,从而影响心肌能量代谢尚未有定论,尤其是SARC灌注对于细胞内、外容量的影响也未见报道。
1 材料和方法
1.1 离体猪心模型的建立 10头体重40~50 kg的家猪,全麻后正中开胸。主动脉根部注入4℃心肌停跳液(10 ml/kg)停跳心脏,快速切取猪心并称重。收集猪血与心肌停跳液以1∶1混合,并加入细胞间隙标志物二甲基磷酸(DMMP)和苯磷酸(PPA),用于灌注离体猪心。DMMP可以分布在细胞总间隙中,而PPA只能分布在细胞外间隙,而二者分布间的差值即代表细胞内间隙[6-7]。灌注液中血红蛋白的浓度约为(51±1)g/L,pH 和氧分压分别为(7.42±0.02) 和(538±25)mmHg。经左心耳通过二尖瓣口在左室放入压力监测气囊,右心室内放置一个装有1 ml 浓度500 mmol/L的磷甲酸(MPA)塑料球,作为定量参照物。经主动脉和冠状静脉窦建立SARC灌注通路。应用Langendorff方法灌注离体猪心,并将猪心置于场强7-Tesla的磁共振(MR)机中心。实验中的心脏温度始终控制在(37.0±0.5)℃。
1.2 心肌灌注和检测指标 先用含DMMP和PPA的钾浓度正常灌注液经主动脉基础顺灌15min,通过测量左室变化压(LVDP)和心率血压乘积(RPP)来评估收缩功能。然后将灌注液中钾浓度升高到20 mmol/L停跳心脏。一旦心脏停跳,灌注方式调整为SARC灌注2 h。主动脉和冠状静脉窦的灌注压分别控制在60~80 mmHg和30~40 mmHg。应用近红外线图谱(NIRS)动态监测左室前壁的心肌含水量变化。同时持续采集整个心脏的31P MR图谱信号以动态观察DMMP、PPA、三磷酸腺苷(ATP)、磷酸肌酸(PCr)和无机磷酸盐(Pi)的含量变化。2 h SARC灌注结束后,仍应用正常钾浓度的灌注液复跳心脏。复跳期间再次测量LVDP和RPP以评价心脏功能。实验结束后称重心脏,计算心脏增加的重量。最后,将100 ml美兰注入左前降支(LAD)以明确左室前壁心肌组织。
1.3 统计方法 应用All-Fit分析软件(IBD, NRC, Canada)处理31P MR图谱。数据用均数±标准差(±s )表示。t检验比较SARC灌注前后细胞内外容量、高能磷酸化合物含量以及收缩功能的变化。P< 0.05表示差异显著。
2 结 果
2.1 近红外线图谱和心肌重量测定 将近红外线图谱的最初8个信号的平均值定为初始值100%,然后用初始值的百分比表示每个时间点的含水量。2h SARC期间心肌水含量逐渐上升,SARC结束时,心肌含水量上升至其初始值的(160±12)%,见图1。另外,心脏重量在SARC后明显增加(43±4)%,水肿程度约为(54±5)%。近红外线图谱和心脏重量的改变均证实SARC期间发生了严重水肿。
2.2 心肌磁共振图谱 由SARC期间心肌的典型31P MR图谱可知,DMMP和PPA在SARC期间均逐渐上升,表示心肌水肿时细胞总容积和细胞外容积都不断增加。而PCr、ATP和Pi的峰值在2 h SARC期间几乎保持不变。通过计算可知,2 h SARC导致细胞内、外容积同时增长,分别增长至各自初始值(100%)的(136±4)%和(154±8)%,见图2。同样,将SARC灌注开始时的PCr、ATP和Pi的各自初始峰值设定为100%,2 h SARC结束时PCr、ATP和Pi含量分别为其初始状态的(122±3)%、(92±7)%和(111±4)%,均未见显著性差异P> 0.05,见图3。
2.3 心脏功能变化 SARC灌注前后的LVDP和RPP也未见明显差别,见图4。
SARC灌注期间LAD的血流速度为(8.9±1.7)ml/min,氧分压为(282±10)mmHg。LAD注入美兰后确定的左室前壁心肌重量为(75±10)g。
3 讨 论
SARC常用于心脏手术中保护重症患者。但是SARC灌注能否引起严重的心肌水肿,从而妨碍心肌的能量代谢尚未可知。另外,SARC灌注对于心肌细胞内、外容量的影响也有待于证实。
如前所述,2 h SARC灌注引起严重的心肌水肿。而且联合应用31P MR图谱和细胞间隙标志物(DMMP和PPA)已经证明SARC灌注引起细胞内、外容量同时增加。众所周知,冠状静脉压升高会导致毛细血管静水压升高[3]。根据Starling公式[8],血管静水压上升会驱使水份进入组织间隙,从而导致间质水肿的发生。另外,心脏停搏液停跳心脏使心肌处于舒张状态,从而导致微血管滤过达到最大程度[9]。心脏停跳也会激活血管活性因子和激素物质的释放,使毛细血管通透性增加[10]。停跳期间,淋巴回流停止也会促进水肿[11]。还有人认为心脏停搏液引起的细胞水肿是由于氯化钾内流造成,因为去除氯离子可以防止组织水肿[10]。SARC期间的钾浓度为20 mmol/L,因此毛细血管静水压升高、心脏停搏液和高浓度的氯化钾协同造成了SARC期间的细胞水肿。
众所周知,心肌的能量代谢主要依靠其所获得的氧供。基于灌注液中血红蛋白浓度为(51±1)g/L、氧分压为(538±25)mmHg和SARC期间LAD的血流速度(8.9±1.7)ml/min,计算得出SARC每分钟大约供给左室前壁心肌0.62 ml氧气。常温停跳状态下,猪心的氧耗率约为6.7 ml/(g·min)[12-13]。由该氧耗率和LAD注入美兰后确定的左室前壁心肌重量(75±10)g计算得出,左室前壁心肌的氧需求约为0.47 ml/min。因此,SARC的氧供给超过了左室前壁心肌的氧需求。结果31P图谱显示2 h SARC期间的含磷代谢产物的含量基本保持不变(图3)。另外,SARC灌注前后的LVDP和RPP未见明显差别(图4)也证明了SARC期间的心肌活性无明显变化。
总之,2 h的SARC灌注能够导致细胞内、外容量同时增加,引起心肌水肿。但是,这个时限内的心肌水肿不影响心肌的能量代谢及收缩功能。再长时间应用SARC灌注能否破坏心肌代谢和功能尚需要更进一步的深入研究。
【参考文献】 [1] Krukenkamp IB, Levitsky S. Myocardial protection and cardioplegia [J]. Curr Opin Cardiol,1993,8(2): 305-10.
[2] Kaukoranta PK, Lepojarvi MV, Kiviluoma KT,et al. Myocardial protection during antegrade versus retrograde cardioplegia [J]. Ann Thorac Surg,1998,66(3): 755-761.
[3] Ericsson AB, Takeshima S, Vaage J. Simultaneous antegrade and retrograde delivery of continuous warm blood cardioplegia after global ischemia [J]. J Thorac Cardiovasc Surg,1998,115(3): 716-722.
[4] 李刚,田伟忱,景慎鸿,等.顺行性/逆行同时灌注对缺血心肌灌注效果和能量代谢的影响 [J].中国胸心血管外科临床杂志,2007,14: 31-35.
[5] 李刚,田伟忱,李君权,等.经单根冠状动脉与冠状静脉窦同时灌注心肌保护的实验研究 [J].中国胸心血管外科临床杂志,2006,13: 331-334.
[6] Clarke K, Anderson RE, Nedelec JF, et al. Intracellular and extracellular spaces and the direct quantification of molar intracellular concentrations of phosphorus metabolites in the isolated rat heart using 31P NMR spectroscopy and phosphonate markers [J]. Magn Reson Med, 1994, 32(2): 181-188.
[7] Barry JA, McGovern KA, Lien YH, et al. Dimethyl methylphosphonate (DMMP): a 31P nuclear magnetic resonance spectroscopic probe of intracellular volume in mammalian cell cultures [J]. Biochemistry, 1993, 32(17): 4665-4670.
[8] Starling EH. On the Absorption of Fluids from the Connective Tissue Spaces [J]. J Physiol,1896,19(4): 312-326.
[9] Laine GA, Granger HJ. Microvascular, interstitial, and lymphatic interactions in normal heart [J]. Am J Physiol,1985,249(4 Pt 2): H834-842.
[10] Drewnowska K,Clemo HF,Baumgarten CM. Prevention of myocardial intracellular edema induced by St. Thomas' Hospital cardioplegic solution [J].J Mol Cell Cardiol, 1991,23(11):1215-1221.