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《神经内科》

胰岛素样生长因子1对大鼠缺血后caspase3和caspase9 mRNA及蛋白表达的影响

发表时间:2010-08-02  浏览次数:320次

  作者:宋利春 张鸿 刘艳艳 作者单位:中国医科大学附属盛京医院神经内科,辽宁 沈阳 110004

  【摘要】 目的 探讨胰岛素样生长因子1(IGF1)对大鼠局灶性脑缺血再灌注(I/R)后caspase3和9 mRNA及蛋白表达的影响。方法 30只Wistar雄性大鼠随机分为假手术组、缺血组及IGF1治疗组。应用线栓法制备大鼠大脑中动脉缺血(MCAO)模型,应用免疫组化方法检测caspase3及9的蛋白表达,应用RTPCR方法检测caspase3及9 mRNA的表达。结果 IGF1治疗组与缺血组相比,caspase3和9蛋白及mRNA表达显著减少(P<0.01)。结论 IGF1能显著减少脑I/R后caspase3和9蛋白及mRNA 表达,对脑I/R损伤发挥保护作用。

  【关键词】 脑缺血;胰岛素样生长因子1;caspase3;caspase9

  胰岛素样生长因子1(IGF1)是一种重要的神经营养因子,在神经组织的生长、分化、修复、再生中具有重要的保护作用〔1〕,近年来研究显示IGF1能显著减轻脑缺血后神经元的缺失,对脑缺血再灌注(I/R)损伤有重要的保护作用〔2〕,但机制尚不完全明确。天冬氨酸特异的半胱氨酸蛋白酶家族(caspases)是细胞凋亡过程中最重要的蛋白酶,凋亡的最后实施是通过caspases的激活而实现的〔3〕。本研究观察了IGF1对大鼠脑I/R后caspase3 和9蛋白及mRNA表达的影响,以明确IGF1的脑保护作用机制。

  1 材料与方法

  1.1 动物与分组 选择健康雄性Wistar大鼠30只,体重为250~300 g之间,由中国医科大学实验动物中心提供,随机分为假手术组、缺血组和IGF1治疗组。每组各10只大鼠,一半用于免疫组化检测,另一半用于RTPCR检测。IGF1治疗组在缺血10 min后经尾静脉给予10 μg IGF1,假手术组及缺血组经尾静脉给予等量生理盐水。IGF1购于北京晶美生物工程有限公司。

  1.2 动物模型 大鼠大脑中动脉缺血模型参考改良Nagasawa线栓法〔4〕。大鼠以10%水合氯醛(350 mg/kg)腹腔内注射麻醉,仰卧固定,颈部正中切口,分离并暴露左侧颈总动脉及颈内外动脉,结扎左侧颈总动脉及颈外动脉根部,由颈总动脉近分叉处剪一小口插入尼龙线(长50 mm,直径0.23 mm,18 mm处做标记),插入长度约(18±0.5)mm时感到有轻微阻力时停止,扎紧并固定插线,缝合皮肤,阻断血流1 h后,拔线实现再灌注。假手术组除不插线外,余步骤同手术组。

  1.3 样品制备 用于免疫组化检测的大鼠在I/R 24 h后经10%水合氯醛深度麻醉(600 mg/kg),迅速打开胸腔,暴露心脏,剪开右心房,于心尖部剪开左心室,插管至主动脉,快速注入100 ml生理盐水冲洗后,再以4%多聚甲醛灌注固定,断头取脑,以4%多聚甲醛固定24 h。常规脱水、透明、石蜡包埋、连续冠状切片,切片厚度6 μm,用于免疫组化染色。用于RTPCR检测的大鼠在I/R 24 h后快速断头取脑,取左侧缺血侧大脑半球半暗带区皮质即距离嗅球尖端7~11 mm,矢状裂至外侧裂上1/3的皮质〔5〕。-70℃冰箱保存进行RTPCR检测。

  1.4 免疫组化检测 切片常规脱蜡至水,滴加3%H2O2室温10 min,蒸馏水洗3 min×3次,微波修复抗原,滴加5%BSA血清封闭液,室温20 min甩去多余液体,滴加一抗(兔抗大鼠caspase3或9 IgG),37℃孵育120 min,PBS洗2 min×3次,滴加二抗(生物素标记山羊抗兔IgG),37℃孵育20 min,PBS洗2 min×3次,滴加试剂SABC,37℃反应20 min,PBS洗5 min×4次,DAB显色,蒸馏水洗涤,苏木素轻度复染,脱水,透明,封片,显微镜观察。胞浆着色呈棕黄色为阳性细胞。caspase3及9免疫组化试剂盒购于武汉博士德公司。在高倍物镜下,取每张切片中梗死灶边缘区域相互不重叠的4个视野,利用计算机图像分析系统测定其积分光密度值(IOD)。

  1.5 逆转录聚合酶链反应(RTPCR) 按常规方法提取RNA。PCR扩增反应:引物序列分别为caspase3:上游正义引物:5′CTGGACTGCGGTATTGAG3′(GenBank NM012922),下游反义引物:5′GGGTGCGGTAGAGTAAGC3′(GenBank NM012922),扩增产物片段长度102 bp;caspase9:上游正义引物:5′CCAGATGCTGTCCCATACC3′(GenBank NM031632),下游反义引物:5′ATTGGCGACCCTGAGAAG3′(GenBank NM031632),扩增产物片段长度228 bp;内参照βactin 引物序列:上游正义引物:5′CACCCTGTGCTGCTCACCGAGGCC3′,下游反义引物:5′CCACACAGATGACTTGCGCTCAGG3′,扩增产物片段为690 bp。PCR反应体系:双蒸水17.1 μl,cDNA 3 μl,10×缓冲液2.5 μl,dNTPs(2.5 mm)2 μl,TaqE(5 U/μl)0.2 μl,caspase3、9、βactin上下游引物各0.1 μl。反应条件:94℃ 40 s变性,51.5℃ 1 min退火,72℃ 1 min延伸,32次循环,72℃ 7 min终止。扩增产物用2%琼脂糖凝胶,TBE电泳缓冲液电泳。RTPCR试剂盒购于大连宝生物技术有限公司。应用1D Kodak成像分析系统对电泳条带进行吸光度(A)值的半定量分析,结果以caspase3、9、mRNA产物的A值Ac与同一样本βactin产物的A值Aβ比值(Ac/Aβ)来表示。

  1.6 统计学方法 数据以x±s表示,组间比较采用t检验。

  2 结果

  2.1 各组caspase3及9蛋白表达的变化 假手术组仅见少量caspase3及9蛋白表达,缺血组及IGF1治疗组caspase3、9蛋白表达较假手术组显著升高(P<0.01),阳性细胞主要分布在缺血半暗带内,IGF1治疗组caspase3及9蛋白表达较缺血组均显著下降(P<0.01)。见表1及图1。

  2.2 各组caspase3及9 mRNA表达的变化 假手术组caspase3和9 mRNA仅见微弱表达,缺血组和IGF1治疗组caspase3及9 mRNA的表达较假手术组显著增多(P<0.01),IGF1治疗组caspase3及9 mRNA的表达与缺血组比较显著下降(P<0.01)。见表1及图2、图3。

  表1 各组caspase3和9 mRNA及蛋白表达的比较(略)

  与假手术组比较:1)P<0.01;与缺血组比较:2)P<0.01

  图1 各组脑缺血再灌注后caspase3及9蛋白表达的比较(免疫组化,×400)(略)

  图2 各组脑I/R后caspase3 mRNA的比较(略)

  图3 各组脑I/R后caspase9 mRNA的比较(略)

  3 讨论

  目前认为caspases家族是一大类凋亡调控基因,迄今为止这一家族至少有14个成员,其中caspase9、3是细胞凋亡线粒体通路中最重要的蛋白酶〔6〕。线粒体通路是指氧自由基、钙超载等凋亡刺激因素使线粒体通透性增加,线粒体跨膜电位(△ψm)下降,释放细胞色素C(CytoC),CytoC主要激活caspase9进而也激活下游的caspase3,诱导细胞凋亡〔7〕。我们的实验证实了缺血组caspase9、3 mRNA及蛋白表达明显增高,提示线粒体通路参与了脑I/R后神经元凋亡的调控。

  IGF1是由70个氨基酸构成的单链多肽,分子量是7 649,和胰岛素原有50%的序列相同。基因编码在12号染色体上,由6个外显子和多个内含子构成。Schwab等发现急性脑梗死病人血浆IGF1和IGF1结合蛋白3 (IGF1BP3)水平下降,而且下降程度及梗死灶大小呈正相关〔8〕。我们的前期研究发现外源性给予IGF1能显著减少鼠脑I/R后脑梗死的体积,减少神经元凋亡〔9〕。本实验结果显示IGF1能显著减少脑I/R后caspase3、9 mRNA及蛋白的表达,这提示IGF1可能通过抑制线粒体途径,来减少脑缺血后神经元凋亡,对脑I/R损伤发挥保护作用。IGF1有可能作为一种有潜力神经保护剂在临床用于脑缺血的治疗。

  【参考文献】

  1 Anlar B,Sullivan KA,Feldman EL.Insulinlike growth factor1 and cerebral nervous system development〔J〕.Horm Metab Res,1999;31(23):192202.

  2 Wang JM,Hayashi T,Zhang WR,et al.Reduction of ischemic brain injury by topical application of insulinlike growth factor1 after transient middle cerebral artery occlusion in rat〔J〕.Brain Res,2000;859(2):3815.

  3 Faubel S,Edelstein CL.Caspases as drug targets in ischemic organ injury〔J〕.Curr Drug Targets Immune Endocr Metabol Disord,2005;5(3):26987.

  4 Nagasawa H,Kogure K.Correlation between cerebral blood flow and histologic changes in a new rat model of middle cerebral artery occlusion〔J〕. Stroke,1989;20(8):103743.

  5 Shi J,Yang SH,Stubley L,et al.Hypoperfusion induces overexpression of βamyloid precursor protein mRNA in a focal ischemic rodent model〔J〕. Brain Research,2000;853(1):14.

  6 袁长青,丁振华.Caspase 的活化及其在细胞凋亡中的作用〔J〕.生理学进展,2002;33(3):2204.

  7 Benchoua A,Guegan C,Couriaud C,et al.Specific caspase pathways are activated in the two stages of cerebral infarction 〔J〕.J Neurosci,2001;21(18):712734.

  8 Schwab S,Spranger M,Krempien S,et al.Plasma insulinlike growth factor1 and IGF binding protein 3 levels in patients with acute cerebral ischemic injury 〔J〕.Stroke,1997;28(9):17448.

  9 张 鸿,郑东明,赵冬雪,等.胰岛素样生长因子1对大鼠局灶性脑缺血再灌注后神经细胞凋亡及 Bcl2,Bax蛋白表达的影响〔J〕.中国现代医学杂志,2004;14(18):148.

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