中枢神经损伤再生修复去抑制作用的研究

作者：尹小磊

【摘要】  　　中枢神经损伤后，由于其所处微环境存在多种轴突生长抑制因子，它们主要通过细胞膜上一个复合受体将抑制信息传递至细胞内，导致生长锥塌陷，轴突生长受到抑制。据此，人们设计了各种方法去除轴突再生时的抑制作用。本文简要的介绍了这些研究。

【关键词】  中枢神经系统　损伤　再生　去抑制作用

　　Research development on disinhibition of the regeneration after CNS injury

    Xiao-Lei Yin, Jian Ye, Chun-Lin Chen

    Foundation items: National Natural Science Foundation of China (No.30572009) ；Sci & Tech Research Project Foundation of Scientific Committee of Chongqing (No.2005BB5273)

    Department of Ophthalmology, Daping Hospita1, the Third Military Medical University, Chongqing 400042, China

    Abstract  Axons in the adult central nervous system（CNS）are unable to regenerate after injury due to the growth-inhibitory proteins present in CNS myelin. Inhibitors signal through a common receptor complex in neurons caused collapse of the growth cone and prevent axon growth. Based on these, there are plenty of researches on disinhibition of axon regeneration. This review focused on these researches.

    · KEYWORDS: CNS；injury；regeneration；disinhibition

　　 0引言

    目前研究表明，中枢神经系统髓磷脂（CNS myelin）中存在大量的轴突生长抑制因子如MAG[1-3]、OMgp[4]、CSPG[5]、Nogo[6-8]（包括Nogo-A，Nogo-B，Nogo-C三种蛋白，其中Nogo-A抑制神经再生的作用最强[9,10]）造成了成年哺乳动物中枢神经损伤后再生困难。它们主要是通过神经元上一个由NgR[11,12]、 p75NTR[13]和LINGO-1[14]组成的复合受体[1,4,11,14,15]　将抑制信号传入细胞内，激活Ras家族RhoA[16,17]，通过ROCK/LIM激酶[18]引起肌动蛋白解聚导致生长锥塌陷[11,12,14]，起到抑制轴突再生的作用。这些研究结果对去除中枢神经损伤后再生修复抑制作用提供了基础。去抑制作用的研究目前主要有以下几种方式：引入特异性物质[16,19]，对神经元细胞内传导的抑制信号进行阻断；使用抗体[20,21]，封闭抑制蛋白；借助基因敲出[11,22]，制作抑制因子缺失突变体，或改变抑制因子受体，关闭其产生生物效应；在细胞内形成特异的siRNA（small interference RNA），对受体蛋白、信号蛋白的形成进行RNA干扰（RNAi）[23,24]。从而使去除中枢神经损伤后再生修复过程中抑制作用成为可能。

    1引入特异性物质阻断抑制信号传导

    抑制信息经受体传入神经元细胞后将RhoA激活，再由活化的RhoA与下游ROCK结合，取代ROCK Ｃ末端自我抑制区，激活其催化区，使其活化，并进一步使肌球蛋白和肌球蛋白磷酸酶磷酸化，抑制肌球蛋白磷酸酶活性，活化肌球蛋白，促使应力纤维形成，调节肌动－肌球蛋白Ⅱ的收缩力，对肌动－肌球蛋白系统造成影响，导致生长锥塌陷，轴突再生受到抑制[18]。

    RhoA是细胞内传导抑制信号、参与信号级联放大过程中及调控细胞支架动力学的关键物质[25-27]。对其进行封闭，可有效阻断再生修复过程中的抑制作用。有研究表明，从肉毒杆菌中提取的C3酶，可对RhoA的效应结构域进行ADP核糖基化作用，从而抑制其与信号传导下游的效应物发生相互作用，阻断信号的传导[28,29]。经C3酶处理后的初级视网膜神经元，即使是位于髓磷脂相关糖蛋白和髓磷脂底物上其轴突仍然可生长延长[16]。

    应力纤维的形成是由Ca2+所调控的，Ca2+的调控信息则通过ROCK（Rho相关丝氨酸/苏氨酸激酶）介导，嘧啶衍生物Y-27632可阻断ROCK对Ca2+调控信息的感受，阻止应力纤维形成，避免影响肌动－肌球蛋白系统，生长锥正常生长，轴突再生[19,30-32]。

2抗体封闭抑制蛋白

    Schwab等[33]研究发现单克隆抗体IN-1能够识别中枢神经系统髓磷脂中大小为250/30kDa可对轴突生长有抑制作用的糖蛋白。使用IN-1封闭此糖蛋白后，可促进轴突再生[20,34,35]，但是再生轴突的数量比较少，因为在中枢神经系统髓磷脂中还存在其他的抑制蛋白[2,36,37]。

    Huang等[21]认识到，如想更好的促进中枢神经的轴突再生，必须将这些抑制蛋白一起封闭，并设计了一种可以同时封闭多种抑制蛋白的方法。他们将富含髓磷脂和一些抑制糖蛋白的小鼠脊髓制成匀浆后对成年雌性BALB/c小鼠（8～10周龄）每周两次进行免疫，3wk后在T9（胸9）水平将脊髓对半切开，使双侧的皮质脊髓束均受损。再继续每周两次免疫3wk后，他们观察到轴突生长的最长长度在不同的小鼠间为5～11mm不等，但大部分都达到了6mm，一小部分为11mm。通过使用富含髓磷脂和一些抑制糖蛋白的小鼠脊髓匀浆对成年小鼠自身免疫系统进行刺激，从而产生可针对多种抑制因子作用的多克隆抗体，在损伤后使脊髓轴突再生增强。

    3基因敲出

    通过基因敲出，可去掉特定基因编码的特定蛋白，从而关闭该蛋白所产生的生物效应。研究证实，关闭了抑制效应的抑制蛋白、受体蛋白缺失突变体，其中枢神经元轴突可有效再生。

    Simonen等[22]使用PGK-neo基因将nogo 基因的2个外显子和1个内含子替换掉，制作出仅 Nogo-A缺失的基因敲出小鼠[6,38]，并观察到将其胸部脊髓对半切开2wk后，Nogo-A基因敲出小鼠与同类野生型小鼠相比，在受伤部位，有更多的皮质脊髓束纤维长出，而未受损的皮质脊髓束纤维也大量发芽。

    将nogo 基因中特异编码Nogo-A/B的外显子直至其下游的ATG始端的整个基因组片断删除，制作出Nogo-A/B缺失突变小鼠，通过对轴突长度的测量，Zheng等[39]发现，用Nogo-A/B缺失突变小鼠的髓磷脂做底物比用同种野生型小鼠的髓磷脂做底物对取材于出生后7d小鼠的小脑神经元轴突生长的抑制程度，降低了1/4。

    Yamashita等[40,41]证实p75NTR跨膜蛋白是将神经元细胞外的信息传给细胞内Rho的信号传导要素，当细胞外的抑制因子结合到由NgR, p75NTR和LINGO-1组成的复合受体[1.4.11.14.15]时， p75NTR细胞内的结构域作用于RhoA[41]，从而实现抑制信号由细胞外进入细胞内。将p75敲出的突变小鼠与同种野生型小鼠相比，其脊髓背根神经节细胞（dorsal root ganglion neurons，DRGN）可明显克服髓磷脂的生长抑制作用[11]。

    4 RNA干扰（RNAi）

    小片段的siRNA能够非常特异性地引起与之序列相应的单个内源性基因mRNA的降解，产生高效的转录后水平基因沉默，形成该基因表型的缺失突变体，消除了该基因表型的生物学效应。且由于siRNA有非常高的特异性，极小的量即能获得高效的中枢神经轴突再生去抑制作用[42]。

    Higuchi等[23]合成了23nt大小，在3′羟基末端有两个不配对且靶向于小鼠p75NTR编码区5′端内侧部的核苷酸，特定的p75-siRNA，通过阳离子转染剂转染到细胞内后，他们发现浓度为2mg/L的p75-siRNA已将p75NTR蛋白的表达封闭，虽然不能改变DRGN原有水平的轴突生长状况，但可以完全阻断MAG对轴突再生的抑制作用。

    根据Elbashir等[43]的设计原理，Ahmed等[24]分别合成了p75NTR-siRNA、NgR-siRNA和RhoA-siRNA。分别将它们进行转染。结果，由于p75NTR-siRNA的存在，DRGN内p75NTR的免疫反应性极其显著的降低，再向其中加入中枢神经系统髓磷脂和FGF2（成纤维细胞生长因子2），神经节细胞轴突再生增强；同样将NgR-siRNA转染DRGN，NgR的免疫反应性也大大降低，中枢神经系统髓磷脂和FGF2同时存在的情况下，神经节细胞轴突βⅢ-tubulin+（βⅢ微管蛋白）生长增强；转染了RhoA-siRNA的DRGN，完全封闭了RhoA蛋白，包括Rho-GTP的表达，使神经节细胞轴突βⅢ-tubulin+生长不受RhoA调节信号的干扰，轴突生长能力增强。

 5结语

    中枢神经系统对人类的重要性不言而喻，为了去除中枢神经损伤再生修复的抑制作用，促进损伤后的中枢神经有效再生[44,45]，人们设计了很多种实验方法来去除这种作用，特别是在分子水平、基因水平进行了大量的研究，除了文中所涉及的一些方法外，有研究证实利用反义寡核苷酸技术也能减弱中枢神经再生的抑制作用[46]。这些成果使人类看到了中枢神经损伤后再生修复的美好前景。但这些去抑制作用的方法，仍存在一定的局限性。如Nogo-A抑制蛋白至少同时拥有两个独立的抑制作用结构域，与Nogo-B,Nogo-C相同的羧基端Nogo-66区域[7,38,47]和被称为NiG的独立中央区抑制结构域[4,6]，虽然可借助基因工程造成神经元细胞p75NTR缺失，将Nogo-66的抑制信息关闭在神经元细胞外，但不通过p75NTR向细胞内传递抑制信息的NiG仍可继续发挥抑制神经元轴突再生的作用[48]。NiG抑制神经元轴突再生主要是通过激活神经元细胞内Rho-A和抑制Rac1，即便是用RhoA-siRNA将表达Rho-A的基因沉默[24]，也只能去除NiG部分抑制作用，且关闭了Rho-A激活途径后，Rac1抑制途径作用是否会因此而增强？此外，在中枢神经系统是否还存在尚未发现的轴突再生修复抑制因子、相应的受体蛋白，以及细胞内的信号传导途径？若要进一步探索去除中枢神经损伤再生修复抑制作用的课题，这些问题仍待研究。

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