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《肿瘤学》

p73基因多态性及蛋白表达与结直肠肿瘤关系的研究

发表时间:2009-11-27  浏览次数:488次

p73基因多态性及蛋白表达与结直肠肿瘤关系的研究作者:刘晓燕, 何利平    作者单位:福州市传染病医院 肝病科,福州 350001;    【摘要】  目的 探讨p73基因的多态性及蛋白表达与结直肠肿瘤发生风险的关系。 方法 血液标本分为3组,包括结直肠腺癌组、结肠腺瘤组、结肠未见明显异常组,各60例。采用PCRRFLP方法检测血液标本p73基因多态性。组织标本分3组,分别取自结直肠腺癌病灶处、结肠腺瘤病灶处、结直肠腺癌患者的相应远离癌灶的正常黏膜组织,各30例,采用免疫组织化学方法检测肿瘤组织中p73蛋白表达情况。 结果 (1)p73基因多态性与结直肠腺癌、腺瘤的发生有相关性,且AT/AT基因型的人群易患结肠肿瘤。(2)p73蛋白表达与结直肠腺癌的发生、发展有相关性。 结论 p73基因多态性与结直肠癌的发生有相关性,且AT/AT基因型的人群易患结肠肿瘤。p73蛋白表达的增加或上调与结直肠癌相关。    【关键词】  结直肠肿瘤; 基因,肿瘤抑制; 肿瘤抑制蛋白质类; 多态现象,遗传  结直肠癌的发生是黏膜上皮受到遗传和环境等多种因素作用、导致多基因改变及相互作用的结果。已知p53基因是人类肿瘤中的重要抑癌基因,而p73基因作为p53家族的成员,在人类肿瘤中也起着重要作用。现已确定TAp73与p53类似,也能诱导不可逆的细胞周期停滞、促进细胞凋亡,并且此功能与TAp73激活p53靶基因如Bax、p2l waf1等的转录有关[1]。p73基因包含一个多态性,在上游起始子AUG外显子,理论上可能形成茎环结构,被认为可以改变基因表达从而影响p73结构。笔者通过研究p73蛋白在结肠腺癌组织、腺瘤组织及正常组织的表达水平,探讨其与结肠腺癌的细胞分化程度以及肿瘤发生发展的关系。1  对象和方法  1.1  对象  所有病例均来自福建省立医院内镜检查和外科手术治疗患者,其中结直肠癌主要指散发型,排除遗传性非息肉病性大肠癌(HNPCC)。详细记录病人性别、年龄及结直肠肿瘤易感因素,如家族史、手术史、饮食等。血液标本分为3组,包括腺癌组60例,腺瘤组60例,未见明显异常组60例。组织标本分为3组,分别取自结直肠腺癌病灶处30例,结肠腺瘤病灶处30例,结直肠腺癌患者的相应远离癌灶的正常黏膜组织30例。所有腺癌或腺瘤均经过内镜形态学及病理组织学证实。“结肠未见异常”为内镜形态学上结肠黏膜光滑的受检者。所有组织标本均为10%甲醛溶液固定、石蜡包埋。  1.2  方法  1.2.1  PCRRFLP  取外周血2 mL,用EDTA抗凝,基因组DNA提取试剂盒(TaKaRa D9081)进行基因组DNA提取,聚合酶链反应限制性片段长度多态性分析(PCRRFLP)。PCR引物(228 bp):    上游:5’CAGGAGGACAGAGCACGAG3’    下游:5’CGAAGGTGGCTGAGGCTAG3’  PCR循环参数:95 ℃变性5 min,95 ℃ 30 s→57 ℃ 45 s→72 ℃ 30 s,进行35个循环,最后72 ℃延伸10 min。PCR产物中加入1 μL限制性内切酶Sty1,37 ℃孵育酶切7~8 h,产物用2%琼脂糖胶电泳,结果用凝胶成像系统分析。  1.2.2  免疫组织化学染色  采用二步法免疫组织化学染色。p73蛋白阳性物质定位于细胞核,呈棕黄色或棕褐色颗粒。阳性判定标准:在显微镜中倍视野(10×10)下观察阳性细胞分布情况,分别取4~5个独立的高倍视野(10×40),各计数200~250个细胞,阳性细胞<10%为阴性,阳性细胞>10%为阳性。比较结直肠腺癌和腺瘤以及远离病灶正常组织的细胞染色密度。  1.3  统计学处理  SPSS 12.0统计软件包进行统计学处理。采用χ2检验和Fisher确切概率法分析p73基因的多态性以及p73蛋白的表达在结直肠腺癌、腺瘤以及正常组中的差别,P<0.05为差别有统计学意义。2  结果  2.1  p73基因多态性  当有AT时,酶切AT为156和72 bp 2个产物,GC型不能被Sty1酶切,仍为228 bp产物(图1)。p73基因多态性在结直肠腺癌、腺瘤组和正常组中的分布见表1。腺癌组和腺瘤组比较,χ2=1.703,P>0.0125,提示p73基因在腺癌组和腺瘤组基因型频率分布无显著差异;腺癌组和正常组比较,χ2=9.713,P<0.0125,提示p73基因在腺癌组和对照组基因型频率分布有统计学意义;腺瘤组和正常组比较,χ2=5.378,P>0.0125,提示p73基因在腺瘤组和正常组基因型频率分布无显著差异。并提示AT/AT基因型的人群易患结肠肿瘤。  图1  PCR扩增产物经酶切后琼脂糖电脉结果(略)  Fig 1  Restriction analysisof p73 gene  表1  p73多态性在腺癌、腺瘤和对照组中的分布(略)  Tab 1  The distribution of the p73 genotypes frequencies  表中数据为n(%).  χ2=10.066,P<0.05.  2.2  p73蛋白在结直肠组织中的表达情况  p73蛋白表达定位于腺癌细胞的细胞核中,呈灶性或弥漫性分布,在结肠腺癌中呈阳性表达(图2),在腺瘤组及对照组表达减少或不表达(图3,表2)。  表2  p73蛋白在腺癌、腺瘤和远离癌灶的正常组织中的表达(略)  Tab 2  The expression of p73 protein in colorectal adenocarcinoma, adenoma and healthy group  表中数据为n.  χ2=15.417,P<0.05.3  讨论    Hamajima等对日本人的研究未发现p73基因型与结直肠腺癌患病风险有联系;Li等对美国人进行头颈部肿瘤的研究,得出AT/AT基因型的人有着一定的结直肠腺癌患病风险;但Ryan等在p73基因的多态性研究中得出,AT/AT基因型可能不容易得食管癌的结论[24]。这些不同的结论,可能是基于研究人群的种族、性别、年龄、环境、社会,甚至是病理学等因素的差异造成的,也可能是肿瘤的类型不同,易患基因型也不同,这需要更多的病例来证实。  A:×100;B:×400.  图2  腺癌中p73蛋白阳性表达(二步法免疫组织化学染色)(略)  Fig 2  The positive expression of p73 in colorectal adenocarcinoma  A:腺瘤;B:正常组织.  图3  p73蛋白阴性表达(二步法免疫组织化学染色×100)(略)  Fig 3  The negative expression of p73 protein in colorectal adenoma or healthy group(×100)  研究表明,p73在许多肿瘤组织中高表达。Yokomizo等发现,野生型p73蛋白在膀胱癌中存在过度表达;Tannapfel等利用原位杂交和免疫组织化学的方法检测到32%的肝细胞癌组织中有p73基因的高水平表达,且这些表达与患者的预后有关,而非肿瘤性肝细胞中p73基因呈低水平表达,提示p73基因的高表达与HCC有关[57]。DNA损伤后,E2F1诱导p73在mRNA和蛋白水平表达增加,而E2F1是受CEBPα反馈调节的。用DNA损伤因子DX损伤细胞后,CEBPα从细胞核内输出,解除了对E2F1的抑制,从而促进了p73的表达增加 [8]。Ozaki认为RACK1 (receptor for activated C kinase1)在SAOS2细胞中的异位过度表达能减少p73α介导的转录,并能抑制依赖p73α的凋亡 [9]。而依赖p53的转录激活和凋亡则不受RACK1的影响,pRB则会抑制RACK1的作用。用复制缺陷的腺病毒表达p73β(Adp73β)转染细胞株,可提高p73β的表达水平,激活目标基因p21WAF1。Adp73β是有效的细胞毒素因子,能引起细胞周期停滞,诱导凋亡,并且能增加化疗的敏感性[10]。但也有文献报道,p73蛋白因细胞分化不同而表达不同,而不是因增殖或者肿瘤表达不同。Kamiya等发现,p73在基底细胞癌和脂溢性角化病中的类似基底细胞中强表达,而在鳞状上皮细胞癌和脂溢性角化病中的类似鳞状细胞中弱表达[11]。本研究也显示,p73蛋白在结直肠腺癌中存在高表达现象,在30例的结直肠腺癌组织中有13例存在高表达,而在腺瘤和正常组织中分别只有3例和2例表达,提示p73蛋白的高表达可能与结肠腺癌有关。【参考文献】  [1] Fang L,Lee S W,Aaronson S A. Comparative analysis of p73 and p53 regulation and effector functions[J]. J Cell Biol, 1999,147(4): 823830.  [2] Hamajima N,Matsuo K,Suzuki T, et al. No association of p73 G4C14toA4T14 at exon 2 and p53 Arg72Pro polymorphism with the risk of digestive tract cancers in Japanese[J]. Cancer Lett, 2002,181(1):8185.  [3] Li G,Sturgis E M,Wang L E, et al. Association of a p73 exon 2 G4C14toA4T14 polymorphism with risk of squamous cell carcinoma of the head and neck[J]. Carcinogenesis, 2004,25(10):19111916.  [4] Ryan B M,McManus R,Daly J S, et al. A common p73 polymorphism is associated with a reduced incidence of oesophageal carcinoma[J]. Br J Cancer, 2001,85(10):14991503.  [5] Yokomizo A,Mai M,Tindall D J, et al. Overexpression of the wild type p73 gene in human bladder cancer[J]. Oncogene, 1999,18(8):16291633.  [6] Tannapfel A,Wasner M,Krause K, et al. Expression of p73 and its relation to histopathology and prognosis in hepatocellular carcinoma[J]. J Natl Cancer Inst, 1999,91(13):11541158.  [7] Herath N I,Kew M C,Whitehall V L, et al. p73 is upregulated in a subset of hepatocellular carcinomas[J]. Hepatology, 2000,31(3):601605.  [8] Mirko M, Faina V, Cristina R, et al. DNA damage induces transcriptional activation ofp73 by removing CEBPα repression on E2F1. Nucleic Acids Research, 2003, 31(22):66246632.  [9] Ozaki T,Watanabe K,Nakagawa T,et al. Function of p73,not of p53,is inhibited by the physical interaction with RACK1 and its inhibitory effect is counteracted by pRB. Oncogene, 2003, 22 (21):32313242.  [10] Sanjeev D, Srikanth N, Sini A,et al. p73bexpressing recombinant adenovirus: a potential anticancer agent. Cancer Gene Therapy, 2005, 12 (3):417426.  [11] Kamiya M,Takeuchi Y,Katho M, et al. Expression of p73 in normal skin and proliferative skin lesions[J]. Pathol Int, 2004,54(12):890895.

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