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《儿科学》

microRNA-646在脂多糖处理后的A549细胞中的表达及功能分析

发表时间:2014-05-27  浏览次数:883次

急性呼吸窘迫综合征(ARDS)现在仍是PICU中威胁人类生命的重要原因之一[1]。据统计,美国ARDs病死率为20。0%~50.0%[2],而我国的病死率高达6.9%[3]。虽然ARDS的发病机制尚未完全明了,但ARDs时减少。hmidt等[4]发现在ARDS患者的肺泡灌洗液中肺表面活性蛋白A(sP-A)、SP-B、SP-C、二棕榈酰卵磷脂明显减少,随着ARDS的好转,其表达水平相应增加。予严重ARDS患者SRC治疗后,能明显减轻缺氧情况,减少病死率。近年来研究发现micr。RNA(血RNA)具有广泛的基因调节功能。多种miRNA在同一个细胞中的表达使细胞处在一种内在的mRNA环境中,这个环境控制着成千上万编码基因的mRNA,使各种蛋白的表达处于合适的水平,调控各种关键蛋白质的表达[5]。血RNA机制的研究可能是基因、蛋白水平有关ARDV急性肺损伤发病机制及治疗研究的重要补充[6]。本研究旨在探讨miR~646在脂多糖处理后的A549细胞中的变化,进一步完善ARDS的发病机制,为ARDS的治疗提供新靶点。现报告如下。

1材料与方法

1.1主要试剂及仪器人肺泡Ⅱ型上皮细胞系A549细胞由南方医科大学肿瘤研究所提供,胎牛血清为澳大利亚的盱clone血清,脂多糖购于美国gma公司,鼠抗人SP-A多克隆抗体、兔抗SRC人多克隆抗体购于美国阮nta cmz公司,免疫组织化学试剂盒(sp-oO23、sp-0024)、DAB/H202显色系统购于北京博奥森生物公司,M-MLⅤ反转录试剂盒、SYBR⒍een qPCR试剂盒均购于美国Invitrogen公司。倒置显微镜为日本0LYMPUS公司产品,实时荧光定量PCR仪为ABI PRIsM 7500电泳仪及转膜仪为美国的Ⅱoad品牌产品。

1.2实验分组A549细胞用含有100mL/L胎牛血清的RPMI-1640培养液,置于37℃、50mL/L CO2培养箱中培养,每天换培养液1次,2,5mL/L的胰蛋白酶消化传代。待细胞生长至70%~20%融合状态时进行实验,每次实验均采用同一代细胞,并用不同批次的细胞重复实验。脂多糖用PBS液溶解成1g/L的母液置-20℃冰箱保存,实验时用RPMI-16绷培养液配成需要的浓度。分组:(1)对照组采用RPMI-1640培养液培养细胞zh镜下观察后进行实验;(2)实验组分别加入终质量浓度为5、10、15mg/L[7]的脂多糖处理以后镜下观察并进行实验。

1.3免疫细胞化学染色法检测A549细胞中sP-A、SP-C的表达水平取对数生长期细胞,将细胞接种于每孔中加入一张55.00000000000001px×55.00000000000001px消毒盖玻片的6孔培养板中,然后按上述分组加药处理培养zh,用PBS液将6孔板中的细胞爬片洗3遍,加人冷乙醇丙酮液(比例1Ⅱ),固定10min,捞片后固定到载玻片上。免疫细胞化学染色采用免疫细胞化学SP法染色,具体操作按试剂盒说明书进行。小鼠抗人SRA多克隆抗体、兔抗人SRC多克隆抗体的工作浓度均为1∶5OO。免疫细胞化学染色结果判定:SP-A、SRC以胞质出现棕黄色颗粒为阳性,每张细胞爬片分别在0LYMPUS显微镜下随机取5个视野,通过I111ageo-PlⅡ分析系统分别检测各组细胞中SP-A、SRC的平均吸光度(A)值。

1.4 Western bIot检测sP-A、sP-C的表达量取对数生长期细胞,然后按上述分组加药处理培养舛h后用PBS冲洗3遍,加人胰蛋白酶消化后将细胞装入EP管中,加人蛋白裂解液冰中裂解30min,13000min离心5血n后吸取上清液进行二辛可酸(BCA)法蛋白定量,加上样缓冲液煮沸10min后准各上样。每组样品取50ug总蛋白加到预制聚丙烯酰胺凝胶后20Ⅴ电泳3h,半干式电转移至硝酸纤维素膜,50g/L脱脂奶粉4℃温封闭过夜,分别加入SRA(1∶200)、SRC(1∶200)、β-actin(1∶500)抗体4℃孵育12h(β-actin为内参),TBST充分洗膜后再分别与过氧化物酶标记的山羊抗鼠(1∶3000)、过氧化物酶标记的山羊抗兔(1∶2000)的瑭G二抗室温孵育1h,TBST充分洗膜,进行增强化学发光法(ECL)显色。曝光后扫描,分别以叩破/β-actin、SP-C/β-actin显影条带灰度值的比值代表sP-A、SRC的表达量。

1.5实时荧光定量PCR检测细胞中的表达量各组取5×106对数生长期细胞,然后按上述分组加药处理培养⒉h后用PBS冲洗3遍,使用TIizd、氯仿等提取出各组细胞的总RNA,取1uL RNA样品100倍稀释,在分光光度计测定各组样晶的九60/A2:0比值,验证RNA的纯度。各取RNA样品1uL,琼脂糖凝胶电泳,80Ⅴ电泳30min,用凝胶成像系统观察总RNA的完整性。使用特异性miR~646及U6RT引物反转录得到cDNA,U6为内参(具体操作按试剂盒说明书进行)。血R-646上游引物5′-ACACTC-CAGCTGGα扒CCAGCTCCCTCTGAG~s,下游弓H勿5′-CT-α咀CTGGTGTCGTGGA-3′;U6上游引物5′-CTCGCTTC⒍GCACCACA~R′。反应体系:tIlNA(1∶20)5.0uL,上游引物0.5uL,下游引物0.5uL,SYBR⒐een PCR M碱er Mk10uL,H20 4uL,共20uL。反应条件:%℃,5血n;%℃,15s;6℃,15s,32s读取荧光;们个循环。为建立PCR产物的熔解曲线,扩增反应结束后继续从”℃缓慢加热到。每个样本重复3次。反应结束后分析PCR反应曲线,取各组的Ct值。实验组的相对对照组的表达量以Ct表示。

1.6统计学处理采用叩SS13.0软件进行分析。数据采用屁±s表示。多组样本均数间的比较采用单因素方差分析,符合方差齐性检验后使用D进行两两比较。P<0.05为差异有统计学意义。

2结果

2.1脂多糖处理前后A549细胞的形态学变化对照组A549细胞形态为多角形,胞质饱满,有胞质突起,呈贴壁生长,长满时融合成片,无核固缩现象。脂多糖处理以h后,A549细胞形态变圆,体积缩小,胞质变空亮,且胞质内出现大小不等的颗粒。

2.2免疫细胞化学法检测各组A549细胞sP-A、sP-C的表达量实验组脂多糖处理zh后SP-A的表达量较对照组下降,差异有统计学意义(P均<0.05),并呈现药物浓度依赖性。脂多糖处理zh后实验组SP-C的表达量较对照组明显下降,差异有统计学意义(P均<0.O5),其中10mg/L脂多糖处理组最低。结果见表1。

2.3 Western blot检测各组A549细胞sP-A、sP-C的表达量脂多糖处理以h后Western lDlot检测实验组SP-A表达量较对照组均下降,差异有统计学意义,且随脂多糖浓度的增加,sP-A的表达量越低,呈药物浓度依赖性。实验组SP-C的表达量较对照组均下降,差异有统计学意义,10mg/L脂多糖处理组SRC的表达量最低,结果见图l、2。

2.4各组AM9细胞的RNA纯度和完整性纯度检测:取1uL RNA样品100倍稀释,使用Gen。va分光光度计测定各组样品的九60剧),说明制各的RNA较纯,无蛋白质污染。总RNA完整性检测:各取RNA样品1uL,琼脂糖凝胶电泳(80Ⅴ3O min),用凝胶成像系统观察总RNA的5S沮NA,18S lRNA和娲S 1·RNA条带,3条条带完整,证明总RNA抽提比较完整.

2.5实时荧光定量PCR检测各组细胞miR~646的表达量血R-646和U6的扩增动力曲线基本一致,熔解曲线均只有一个单一的峰值,说明实时定量聚合酶链反应过程中无非特异性扩增产物生成。血R-646在对照组的相对表达量为0.95叨±0.Ⅱ00,5mg/L脂多糖处理组的相对表达量为1.b~s19±0.13,10mg/L脂多糖处理组的相对表达量为2.狎62±01320,15mg/L脂多糖处理组的相对表达量为1.42±0.O938。实验组与对照组比较差异均有统计学意义(F=98.9盯,P均<0.01),其中10mg/L组的相对表达量最高。各组miR~646的相对表达量的柱状图见图3。

2.6 miR-646的表达和sP-C的表达的相关性脂多糖处理A549细胞后,血R-646的表达量和叩-C的表达量呈浓度依赖的负相关性(r=o.916,P<0.O5)。

3讨论

ARDs是指脓毒症、多发伤、大量急诊输血、胃肠内容物吸入、溺水、肺挫伤、重症肺炎和药物过量等肺内外疾病侵袭后出现的以肺上皮细胞、肺泡毛细血管损伤和合成减少为主要表现的临床综合征。其临床特征包括呼吸频速和窘迫,进行性低氧血症,Ⅹ线呈现弥散性肺泡浸润。现阶段ARDS的发病机制仍未完全清楚,目前考虑主要为2个方面:(1)多种炎性介质大量释放引起肺泡上皮细胞及肺泡内皮细胞的损伤、肺泡中积聚富含蛋白及中性粒细胞的渗出液,形成透明膜[9]。(2)肺泡Ⅱ型上皮细胞受损使表面活性物质合成减少,成分改变[10]。是由肺泡Ⅱ型上皮细胞合成的磷脂蛋白复合物,主要成分包括二棕榈酰卵磷脂及肺表面活性相关蛋白。肺表面活性相关蛋白能降低肺泡液-气界表面张力并防止肺泡在呼气末低肺容量所造成的塌陷,增加肺的顺应性从而更好地维持肺的正常呼吸功能。A5细胞为人肺泡Ⅱ型上皮细胞系细胞,能产生各种肺表面活性蛋白,以人肺泡Ⅱ型上皮细胞系A549细胞为模型,通过来源于革兰阴性菌的细胞外膜的脂多糖的处理,发现A549细胞分泌的SP-A、叩-C的量均下降,这和临床的结果一致。进一步分析结果发现随脂多糖浓度的增加,叩△的表达量逐渐减少,呈药物浓度依赖性;SRC的表达量实验组较对照组均下降,10mg/L脂多糖处理组叩-C的表达量最低,对于sP-C,10mg/L是最佳的脂多糖处理质量浓度。这样建立了ARDS的模型,为对ARDS的发生机制、病理生理等方面进一步的研究提供了基础。

miRNA是一类广泛存在于真核生物中的、长21~笏碱基的非编码小分子RNA。在动物体中,其作用机制是以不完全互补的方式和靶基因的3′端非编码区序列相结合,通过抑制蛋白质的翻译发挥其生物学功能,这种调控一般不会影响靶基因mRNA的稳定性。miRNA通过这种作用机制抑制靶基囚的表达,进而在蛋白质的合成、神经细胞的发育、胚胎发生过程中关键蛋白质的表达等方面发挥重要作用。现阶段研究最多的是miRNA和肿瘤、糖尿病、自身免疫性疾病等疾病的关系。血RNA和肺部疾病的关系也越来越受到重视[ll],如miRNA与肺生长发育的关系、雨RNA与肺部感染性疾病的关系[12]、血RNA与肺纤维化的关系[13-14]、血RNA与哮喘的关系[15]、血RNA与ARDV急性肺损伤的关系。本研究通过实时荧光定量PCR验证了miR~646在实验组中的高表达,在不同质量浓度脂多糖处理A~s⒆细胞后,血R-646的表达量逐渐上升,在脂多糖质量浓度为10mg/L时最高,质量浓度为15mg/L时略下降;同样在不同质量浓度脂多糖处理A549细胞后,叩-C的表达逐渐减少,在脂多糖质量浓度为10 mg/L时最低,质量浓度为15mg/L时略上升。结果显示:血R-646的表达与叩-C的表达呈质量浓度依赖的负相关,二者变化基本同步。

通过血Base、TargetScan预测发现miR~646的其中一个靶基因是叩TPC,血R-646和叩-C mRNA3′端非编码区存在大量互补的序列,而弘646可能和SRC mRNA3′端的互补序列结合来抑制SP-C的翻译。在ARDS过程中高表达的miR~646以不完全互补的方式和SRC mRNA3′端非编码区结合,通过抑制SFTPC的翻译进而减少S弘C的分泌,在ARDS过程中发挥其生物学功能。还需要进一步通过病毒载体构建miR~646过表达体或通过反义寡聚核苷酸等基因敲除miR~646的方法进一步来验证,这是本研究组下一步实验的重点。除miR~646外,是否还存在其他的miRNA通过影、的分泌在ARDs时发挥作用,还需要进一步的研究。目前国内外对ARDS的miRNA方面的研究主要集中在miRNA在感染、免疫、肺损伤方面的影响[17],未见miRNA在ARDS中影响蛋白分泌的报道。随着研究的深入,miRNA可能会成为ARDS诊断中的生物学标记及分子学的治疗手段。

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