当前位置:首页 > 文献频道 > 临床内科学 > 文献详细

《分泌代谢病学》

核因子κB在胰岛素抵抗大鼠动脉内皮细胞的表达及意义

发表时间:2010-07-29  浏览次数:477次

  作者:王艳军 赵晟 作者单位:中国医科大学附属盛京医院内分泌科,辽宁 沈阳 110004

  【摘要】 目的 观察胰岛素抵抗(IR)大鼠血清脂联素及动脉内皮细胞内核因子κB(NFκB)的变化。方法 4周龄雄性Wistar大鼠30只,随机分成对照组、高脂组、高脂高糖组,喂养8 w后,用高胰岛素正血糖钳夹技术评估IR程度,酶联免疫吸附测定大鼠血清脂联素,免疫组化的方法测定动脉内皮细胞内NFκB。结果 高脂组、高脂高糖组产生IR,高脂高糖组较高脂组明显;血清脂联素对照组高于高脂组及高脂高糖组(P<0.01),高脂组又高于高脂高糖组(P<0.05);动脉内皮细胞NFκB在高脂组和高脂高糖组动脉内皮细胞的表达明显高于对照组。结论 高脂饮食可诱导大鼠产生IR,IR大鼠血清脂联素降低,NFκB在动脉内皮细胞的表达升高。

  【关键词】 胰岛素抵抗;脂联素;核因子κB

  基金项目:辽宁省教育厅课题(No.2004D166)

  Expression and significance of NFκB in artery endotheliocyte of insulin resistance rats

  【Abstract】Objective To observe the change of serum adiponectin and NFκB in artery endotheliocyte of insulin resistance (IR)rats.Methods Thirty Wistar male fourweekold rats were randomly divided into control,high fatty diet and fattyhyperglycemic diet groups.8 w later,IR degree was evaluated by hyperinsulinism euglycemic clamp technique,serum adiponectin were detected by ELISA,NFκB of artery endotheliocyte were determined by immunohistochemisty.Results IR was found in high fatty and fattyhyperglycemic diet groups,especially for fattyhyperglycemic diet group.Serum adiponectin in control group was higher than that in high fatty and fattyhyperglycemic diet groups (P<0.01),that of high fatty group was higher than that of fattyhyperglycemic diet group (P<0.05).NFκB in high fatty and fattyhyperglycemic diet groups was distinctly higher than that in control group (P<0.05).Conclusions IR can be successfully induced with high fatty or fattyhyperglycemic feeding.Serum adiponectin is distinctly lower,NFκB expression in artery endotheliocyte is higher in IR rats.

  【Key words】Insulin resistance;Adiponectin;NFκB

  胰岛素抵抗(IR)是代谢综合征(MS)的病理生理基础。IR和动脉粥样硬化(AS)可能涉及同一发病机制即炎症反应,因此在IR状态下动脉内皮炎症发病机制的研究成为热点。C反应蛋白(CRP)直接影响AS斑块和血栓形成〔1〕,脂联素的水平与IR及AS的形成密切相关,本研究以单纯饮食诱导大鼠产生IR,观察IR大鼠的动脉内皮细胞核因子(NF)κB的表达情况,测定大鼠血清中脂联素水平,探讨IR情况下AS发生、发展的可能机制,并为早期治疗提供一定的理论基础。

  1 材料与方法

  1.1 实验动物

  4周龄的雄性Wistar大鼠30只。大鼠可以自由饮水,房间保持12 h的明暗循环。将30只雄性Wistar大鼠随机分为对照组(标准饲料:蛋白质21%,脂肪19%,碳水化合物60%)、高脂组(高脂饲料:蛋白质21%,脂肪60%,碳水化合物19%)和高脂高糖组(高脂饲料:蛋白质21%,脂肪60%,碳水化合物19%,给予40 g蔗糖)。饲养8 w,每2 w测量体重1次并记录。

  1.2 IR评估

  应用高胰岛素(INS)正血糖钳夹技术。经静脉输液泵恒定注入速效INS(6.0 mU·kg-1·min-1)(诺和诺德公司产品)。每5 min经动脉采血10 μl测定血糖(葡萄糖氧化酶电极法,BIOSEN5030,德国产)根据血糖值调整葡萄糖(20%)的输入速度,使血糖维持于空腹(FPG±0.5 mmol/L)水平,如此过程经过120 min,后60 min的血糖值和葡萄糖的输入速度都进入稳定期,计算60~120 min的葡萄糖输注率(GIR),作为受试个体的INS敏感性的指标。GIR(mg·kg-1·min-1)=稳定期葡萄糖的平均输入速度(ml/h)60(h换算为min)×20%(葡萄糖浓度)÷体重(kg)。

  1.3 大鼠血清超敏CRP、脂联素水平测定

  酶联免疫吸附测定(ELISA)试剂盒(上海朗卡科技有限公司);大鼠游离脂肪酸(FFA)ELISA铜染色试剂盒(南京建成生物工程研究所),大鼠血清INS ELISA试剂盒(大连泛邦化工有限公司),抗大鼠NFκB p56的单克隆抗体,抗大鼠单核细胞趋化蛋白1单克隆抗体,SABC免疫试剂盒,免疫组化PBS缓冲液,以上试剂均购自武汉博士德公司。

  1.4 统计学分析

  所有数据用x±s表示,采用统计学软件SPSS11.0进行单因素方差分析及组间比较。

  2 结 果

  2.1 各组大鼠血清脂联素、FFA、超敏CRP(hsCRP)及GIR水平比较

  对照组血清脂联素及GIR含量明显高于高脂组和高脂高糖组(P<0.01),高脂组明显高于高脂高糖组(P<0.05)。对照组血清FFA、hsCRP及INS含量明显低于高脂组和高脂高糖组(P<0.01),高脂组明显低于高脂高糖组(P<0.05)。见表1。表1 各组大鼠血清脂联素、FFA、hsCRP、INS及GIR的变化(略)

  2.2 GIR与血清脂联素、FFA、hsCRP的相关性

  血清脂联素与GIR呈正相关(r=0.760,P<0.001);FFA和hsCRP与GIR 呈负相关(r=-0.742,P<0.001;r=-0.470,P<0.05)。

  2.3 各组大鼠颈动脉内皮细胞NFκB的表达

  对照组颈动脉内皮细胞细胞核呈蓝色,在细胞核中未见NFκB表达。高脂组和高糖高脂组颈动脉内皮细胞细胞核呈棕黄色,NFκB在细胞核中呈强阳性表达。见图1。

  3 讨 论

  血浆脂联素浓度和INS的敏感性直接相关,并与内脏和腹内脂肪呈负相关,IR血浆脂联素水平降低,脂联素可通过在肌肉和肝脏增加脂肪氧化而降低脂质水平〔4〕。在动物模型及人体中均已证实低脂联素血症与IR相关。脂联素具有血管保护作用,它能抑制巨噬细胞向泡沫细胞转化,脂联素基因敲除可以促进小鼠动脉粥样硬化形成〔5〕,参与携带平滑肌细胞的增殖与迁移,并通过多种机制抑制血管的炎症反应,保护内皮细胞,减少动脉硬化形成。脂联素基因的腺病毒可恢复脂联素水平,显著阻断此作用。用脂联素腺病毒基因治疗载脂蛋白E缺陷小鼠可以防止AS形成〔6〕。有研究发现,脂联素可在血管壁受损处聚集,并可剂量依赖性抑制TNFα等炎症因子,从而发挥抗动脉硬化和抗炎症的作用,说明脂联素水平降低与AS形成密切相关〔7〕。具有抗炎、抗动脉硬化作用的INS增敏剂可使脂联素水平增高〔8〕。脂联素促进FFA氧化,提高INS敏感性,增加外周组织对葡萄糖的摄取,抑制肝脏葡萄糖的输出和葡萄糖再生。有研究显示,脂联素水平降低会增加缺血性心肌病的发生〔9〕。脂联素抗炎抗AS作用是通过减少细胞内NFκB信号传递及细胞炎症因子的表达实现的,从而发挥抑制血管早期炎症的功能。通过以上论述及本研究结果,可知IR可通过抑制体内脂联素的表达和分泌促进动脉血管炎症的发生。

  高脂饮食导致Wistar大鼠的体重增加,特别是腹部脂肪含量的增加,使机体大量脂肪分解生成FFA增加,长期的高FFA对胰岛和外周组织有脂毒性,导致胰岛β细胞功能减退,大鼠出现IR状态。FFA升高能降低INS在肝脏中的作用,减少INS清除,导致肝脏IR。FFA在体内的降解时,使肝内甘油三酯和脂蛋白的分泌增加,是AS的基础。

  【参考文献】

  1 Devaraj S,Xu DY,Jialal I.Creactive protein increases plasminogen activator inhibitor1 expression and activity in human aortic endothelial cells:implications for the metabolic syndrome and arterothrombosis〔J〕.Circulation,2003;107(3):398404.

  2 Castoldi G,Galimberti S,Riva C,et al.Association between serum values of Creative protein and cytokine production in whole blood of patients with type 2 diabetes〔J〕.Clin Sci,2007;13(2):1038.

  3 Ford ES.Body mass index,diabetes and Creactive protein among US adults〔J〕.Diabetes Care,1999;22(12):19717.

  4 Greenfield JR,Campbekk LV.Insulin resistance and obesity〔J〕.Clin Dermatol,2004;22(4):28995.

  5 Kubita N,Terauchi Y,Yaroauchi T,et al.Disruption of adiponectin causes insulin resistance and neointimal formation〔J〕.J Bio Chem,2002;277(29):258636.

  6 Yaroauchi T,Kamon J,Waki H,et al.Globular adiponectin protected ob/ob mice from diabetes and ApoEdeficient mice from atherosclerosis〔J〕.J Biol Chem,2003;278(4):24618.

  7 Diez JJ,Iglesias P.The role of the novel adipocytederived hormone adiponectin in human disease〔J〕.Eur J Endocrinol,2003;148(3):293300.

  8 Maeda N,Takahashi M,Funahashi T,et al.PPARgamma ligands and increase expression and plasma concentrations of adiponectin,an adiposederived protein〔J〕.Diabetes,2001;50(9):20949.

  9 Kawano T,Saito T,Yasu T,et al.Close association of hypoadiponectinemia with arteriosclerosis obliterans and ischemic heart disease〔J〕.Metabolism,2005;54(5):6536.

医思倍微信
医思倍移动端
医思倍小程序