Thrombospondin1在糖尿病肾病中的表达及其意义
发表时间:2009-07-16 浏览次数:568次
作者:孔刚 ,吕学爱 作者单位:1.泰山医学院,山东 泰安 271016; 2.泰山医学院附属泰安医院,山东 泰安 271000
【关键词】 Thrombospondin1;转化生长因子β;肾纤维化;糖尿病肾病
据世界卫生组织报道,2006年全世界糖尿病的发病人数是1.8亿,并且逐年增加[1],其中1/3的人最终会发展为糖尿病肾病(DN)。在西方国家,DN是引起终末期肾病的主要原因[24]。糖尿病肾病的特点是肾小球、肾小管细胞肥大、凋亡,细胞外基质积聚和纤维化,足细胞损伤,肾小球基底膜增厚,从而导致肾功能衰竭。许多研究已经证实:转化生长因子β(TGFβ)在糖尿病肾病的发病机制中发挥重要作用[37]。TGFβ在与其受体结合前必须被某种因子活化,最近研究证实这种因子主要是Thrombospondin1(TSP1)。现就TSP1在肾纤维化、糖尿病肾病中的表达及其意义作以下综述。
1 TSP1的分布与调控
TSP1(又名血小板反应蛋白1,血小板反应素1,凝血酶敏感蛋白1)由Baenziger[8]等首次从凝血酶刺激后的血小板细胞膜中分离。TSP1是一个分子量为450 kD的同源三聚体基质糖蛋白,主要由血小板α颗粒分泌,此外,体内多种细胞均可产生TSP1:肾组织中、血管内皮细胞、平滑肌细胞、包曼氏囊上皮细胞、系膜细胞、间质单核巨噬细胞及肾小管上皮细胞均可表达TSP1。
在正常个体,TSP1的血浆浓度很低(约180 nk/ml), 但可通过激活的血小板a颗粒释放使其局部浓度快速增高,体内许多因子都可参与调节TSP1的表达水平。TSP1基因被归为立即早期反应基因, Dameron等[9]证明PDGF、TGFβ、bFGF等多肽生长因子及P53肿瘤抑制基因产物可以上调TSP1 mRNA及蛋自水平,IL1B、TNFa则可下调TSP1的蛋白水平,但这些因子不能改变TSP1的mRNA水平, 推测这些因子作用于翻译后的调控过程。
因此,在体内组织发育和修复过程中TSP1蛋白产物可以通过多种机制调节使其迅速地在合适的位置合成,使TSP1蛋白在组织发育、损伤愈合及血管新生等病理生理中发挥作用。
2 TSP1的功能结构域
TSP家族包括TSP1、TSP2、TSP3、TSP4和COMP/TSP5 (catilage oligometricmatric protein, COMP)5种类型,其中对TSP1研究较多。TSP 家族成员具有相似的结构、共同的生物学特性和各自独特的功能。1986年,Lawler和Hynes[10]克隆出了TSP1的CDNA编码序列。它的编码基因位于15q15,全长约16 Kb, 含22个外显子,读码框约5.8 Kb,在启动子区域包含多个转录因子的结合位点。完整的TSP1分子由三个分子量为180 kD、不对称的亚基组成。单个亚基由N端、C端球状结构域及两者之间的原胶原同源区、备解素样typeⅠ重复序列、表皮生长因子样typeⅡ重复序列及钙离子结合区typeⅢ重复序列组成。
根据TSP1与其他分子的相互作用, 可将其分为7个结构域:①NH3末端 可与多配体蛋白聚糖、硫酸乙酞肝素糖蛋白HSPG、硫昔醋等结合, 介导TSP1与肝素结合,调节细胞接触、游走、增殖及血小板聚集;②原胶原同源区 可通过亚基聚集抑制血管新生;③typeⅠ重复序列 由三个备解素样基序重复组成,含有肝素结合位点,可结合TGFβ1等多种蛋白因子,它是TSP1抑制内皮细胞增殖、诱导内皮细胞凋亡和抑制血管新生等作用的结构基础,目前对TSP1结构与功能研究的重点集中在此区段;④type11序列 由3组重复的类表皮生长因子组成,与可溶的基质蛋白相互作用;⑤type111序列 由7组重复的钙结合位点序列组成,是TSP1与钙离子结合的主要区域;⑥RGDA 四肽序列 可与整合素结合;⑦COOH端 可与整合素相关蛋白结合, 介导细胞粘附、游走、血小板聚集。
3 TSP1在肾纤维化中的作用
研究表明[11],老龄鼠模型中肾小球及肾间质的TSP1表达增加,与肾小球毛细血管及肾小管周围毛细血管数量呈负相关,管周毛细血管密度与间质纤维化、蛋白尿呈负相关。在大鼠残肾模型研究中发现,TSP1表达增加,第8周维持在较高水平[12],Hugo等[13]也证实:在各种肾小球细胞以及肾小管上皮细胞、间质损伤部位的部分肌成纤维母细胞、巨噬细胞中,TSP1随着间质及肾小球纤维化进展呈持续稳定高表达,多在TGFβ1高表达部位表达。已有许多研究证实, TGFβ在多种类型的肾脏疾病的纤维化过程起重要作用。TSP1可以通过TGFβ依赖和非依赖机制调节它周围的环境,激活潜在的TGFβ促进肾小球硬化和肾间质纤维化。从时间表达与空间分布看,TSP1高表达与局部活化的TGFβ表达相一致,推测其可能参与了肾脏纤维化进展。而在蛇毒诱导肾小球肾炎模型研究中发现:损伤早期,血小板及巨噬细胞来源的TSP1与系膜细胞迁移有关;系膜细胞来源的TSP1与细胞增殖、迁移有关,而与细胞基质积聚无关,TSP1分泌可能是对炎症及早期纤维化的生理适应性反应,可能是肾小球及肾小管间质炎症、早期纤维化的标志[14,15]。TSP1表达先于小管间质纤维化,在量与空间上与纤维化相关,预测纤维化严重程度较巨噬细胞、肌成纤维母细胞积聚程度等指标好[16]。而在几种肾小球肾炎动物模型中(抗Thy1模型、抗腺嘌呤核苷肾病模型、被动Heymann肾炎模型)发现在损伤间质附近的肾小管细胞、肌成纤维母细胞及部分巨噬细胞中,TSP1呈一过性表达增强,与上述有关TSP1表达研究结果不一致,原因目前尚不清楚。体外系膜细胞研究发现,血管紧张素II (Angiotensin II ,AngII) 诱导的TGFβ1的活化也是通过TSP1介导的,AngII 1 型受体阻滞剂可以抑制AngII 诱导的TSP1的分泌, TSP1 特异性阻断肽可以抑制AngII 诱导的TGFβ1 的活化,AngII 诱导的TSP1 的分泌可通过P38 MAPK和JNK信号通路进行信号传递[17]。越来越多的证据表明,在炎症性肾脏疾病中TSP1是TGFβ1所致肾脏纤维化的主要激活物,但是否存在TGFβ之外的其它激活物的参与不能完全排除。
4 TSP1在糖尿病肾病中的表达及意义
TSP1 在糖尿病肾病中起重要作用[18]。1型糖尿病患者血浆TSP1浓度与正常对照组相比明显增加。体外试验表明系膜细胞在病理性高糖作用下TSP1表达明显上调。系膜细胞短期(6 d) 或长期(4周)暴露于高糖浓度下,TSP1表达和其它ECM蛋白均增加。大鼠系膜细胞在高糖培养下TSP1 和TGFβ表达均增加。拮抗TSP1依赖的TGFβ的激活,例如使用抗TSP1 抗体、抗TSP1反义寡核苷酸或人工合成肽(GGWSHW 或LSKL) ,可以阻断葡萄糖刺激的TGFβ的活性和ECM 蛋白合成[1923]。Tada.H等[24]证实高糖诱导的系膜细胞TGFβ1 的激活依赖高糖诱导的蛋白激酶C通路的活化,使系膜细胞合成TSP1增加,促进TGFβ1在系膜细胞中以自分泌的方式活化。另一方面,因为高糖可减少纤维蛋白溶解酶和组织蛋白酶D的活性,且由于蛋白水解酶也参于TGFβ1的活化,故高糖可减少TGFβ1依赖蛋白水解酶的活化途径,高糖诱导的TGFβ1的活性增加主要依赖TSP1—TGF—β1途径[25]。Schuitz等[26]检测了高糖刺激下肾系膜细胞所分泌的TGFβ1的活化和细胞外基质的合成, 发现这一过程主要依赖于自分泌的TSP1可将TGFβ1前体转化为具有生物活性形式。同时, 又发现高糖培养基中NO的浓度和细胞内cGMP水平显著下降, 进一步提示高糖通过抑制NOcGMP依赖蛋白激酶C(PKC)的活化, 来提高TSP1依赖的TGFβ1的活化。研究表明, NO信号传递以及PKC活性在高糖介导的TSP1表达改变中起重要作用[27]。Wang 等[28]证实了这一观点。
研究发现,晚期糖基化终末产物(advanced glycation endproducts ,AGEs)虽然没有诱导远端肾小管表达TGFβ1mRNA ,但TGFβ1的生物学活性显著增加[29]。AGEs提高细胞内和细胞外的TSP1水平呈剂量依赖性。[33]加入抗TSP1中和抗体可以减少AGEs诱导的TGFβ1活性的增加和肾小球和小管的肥大。由于体外细胞培养中证实TGFβ可增加TSP1mRNA和蛋白水平,故TSP1蛋白水平的上调有可能是由于TGFβ以自分泌正反馈机制调节的,而LSKL 和GGWSHW 肽抑制TGFβ1 活化或使用抗TGFβ抗体在30 mmol/ L D2葡萄糖培养的系膜细胞中均不能改变TSP1蛋白水平,表明TSP1与纤连蛋白、骨桥蛋白和胶原IV不同,葡萄糖介导的TSP1的表达不是通过TGFβ1依赖机制[30] 。Yung[31]等研究发现,高糖能促进人近端肾小管上皮细胞血小板反应素1(TSP1)的合成,TSP1能增强TGFβ1的活化,引发FN的集聚,而TGFβ1亦能调节TSP1的合成,形成TSP1与TGFβ1的自分泌环,共同促进肾小管的损伤。而Abdelouahed等[32]研究表明TSP1不能活化TGFβ1,与上述研究结果存在分歧。TSP1能否活化TGFβ1及相应机制有待于进一步研究。
总之,TSP1在糖尿病肾病中的作用可以归纳为以下几点:①TSP1可预测和判断肾脏病进展过程中间质纤维化的发展;②TSP1是肾小球系膜细胞和内皮细胞增殖的有效抑制物;③抑制了肾脏微血管系统受损后的修复;④TSP1是TGFβ1重要的激活物。阻断TSP1的各种方法为糖尿病肾病的治疗开拓了新的思路。
【参考文献】 [1] World Health Organization. Diabetes: World Health Organization Fact Sheet. Geneva, World Health Organization, 2006, 312:1–2.
[2] Russell TA. Diabetic nephropathy in patients with type 1 diabetes mellitus[J]. Nephrol Nurs J, 2006,33:1530.
[3] Nicholas SB. Advances in pathogenetic mechanisms of diabetic nephropathy[J]. Cell Mol Biol (Noisylegrand) ,2003, 49:13191325.
[4] Broumand B. Diabetes: changing the fate of diabetics in the dialysis unit[J]. Blood Purif, 2007, 25:3947.
[5] Pantsulaia T. Role of TGFbeta in pathogenesis of diabetic nephropathy[J]. Georgian Med News, 2006, 131:1318.
[6] Ziyadeh FN. Mediators of diabetic renal disease: the case for tgfbeta as the major mediator[J]. J Am Soc Nephrol, 2004, 15 :55–57.
[7] Lawrence DA. Transforming growth factorbeta: a general review[J]. Eur Cytokine Netw,1996, 7: 363374.
[8] Baeniziger NL, Brodie GN, Majerus PW. A thrombinsensitive protein of human plate membernes[J]. Proc Nail Acad Sci, 1971,68: 240243.
[9] Dameron KM, Volpert OV, Tainsky MA,et al. Control of angiogenesis in fibroblasts by p53 regulation of thrombospondin1[J].Science,1994,265:15824.
[10] Lawer J Hynes RO.The struelure of human thrombospod1 in ,an adhensive glycoprotem with multiple calcium binding sites and homologies with several different proteins[J]. J Cell Biol, 1986,103:163548.
[11] Kang DH, Anderson S, Kim YGet al. Impaired angiogenesis in the aging kidney: vascular endothelial growth factor and thrombospondin1 in renal disease[J]. Am J Kidney Dis, 2001, 37(3):601611.
[12] Kang DH, Joly AH, Oh SWet al. Impaired angiogenesis in the rem nant kidney model: I. potential role of vascular endothelial growth gactor and thrombospondin1[J]. Am Soc Nephrol, 2001, 12(7): 1 4341 447.
[13] Hugo C, Kang DH, Johnson RJ, et al. Sustained expression of throm bospondin1 is associated with the development of glomerular and tubulointerstitial fibrosis in the remnant kidney model[J]. Nephron, 2002, 90(4): 460470.
[14] Isenberg JS, Frazier WA, Roberts DD. Thrombospondin1: a physiological regulator of nitric oxide signaling[J]. Cell Mol Life Sci, 2008, 65(5): 72842.
[15] Misra S, Lee N, Fu AA, et al. Increased expression of a disintegrin and metalloproteinase thrombospondin 1 in thrombosed hemodialysis grafts[J]. J Vasc Interv Radiol, 2008, 19(1): 1119.
[16] Hugo C, Shankland SJ, Pichler RH, et al. Thrombospondin 1precedes and predicts the development of tubulointerstitial fibrosis in glomerular disease in the rat[J]. Kidney Int, 1998, 53 ( 2) :302301.
[17] Naito T, Masaki T, Nikolic2Paterson DJ, et al . Angiotensin IIinduces thrombospondin21 production in human mesangial cells viap38 MAPK and JNK: a mechanism for activation of latent TGF2B1[J]. Am J Physiol Renal Physiol, 2004, 286 (2) :2782287.
[18] Daniel C, Schaub K, Amann K, et al. Thrombospondin1 is an endogenous activator of TGFbeta in experimental diabetic nephropathy in vivo[J]. Diabetes, 2007, 56(12): 29829.
[19] Qi W, Chen X, Zhang Y, et al. High glucose induces macrophage inflammatory protein3 alpha in renal proximal tubule cells via a transforming growth factorbeta 1 dependent mechanism[J]. Nephrol Dial Transplant, 2007, 22(11): 314753.
[20] Belmadani S, Bernal J, Wei CC, et al. A thrombospondin1 antagonist of transforming growth factorbeta activation blocks cardiomyopathy in rats with diabetes and elevated angiotensin II[J]. Am J Pathol, 2007, 171(3):77789.
[21] Dabir P, Marinic TE, Krukovets I, et al. Aryl Hydrocarbon Receptor Is Activated by Glucose and Regulates the Thrombospondin1 Gene Promoter in Endothelial Cells[J].Circ Res, 2008,30.
[22] Calzada MJ, Kuznetsova SA, Sipes JM, et al. Calcium indirectly regulates immunochemical reactivity and functional activities of the Ndomain of thrombospondin1[J]. Matrix Biol, 2008, 27(4):33951.
[23] Bhattacharyya S, Marinic TE, Krukovets I, et al. Cell typespecific posttranscriptional regulation of production of the potent antiangiogenic and proatherogenic protein thrombospondin1 by high glucose[J]. J Biol Chem, 2008, 283(9):5699707.
[24] Tada H, Kuboki K, Nomura K, et al . High glucose levels enhance TGFbeta1 thrombospondin1 pathway in cultured human mesangial cells via mechanisms dependent on glucose2induced PKC activation[J]. J Diabetes Complications, 2001,15 (4) :193197.
[25] Yevdokimova N, Wahab N A, Mason RM. Thrombospondin21 is the key activator of TGF2beta1 in human mesangial cells exposed to high glucose[J]. J Am Soc Nephrol, 2001,12 (4) :703712.
[26] Schuitz S,Chen H, Mosher Df, et al. Regulation of transforming growth factorβ activation by discrele sequcnces of Thrombospondin1[J]. Biol chem, 1995,270:73047310.
[27] Shuxia W, Sruti S, Maria H, et al. Nitric Oxide and cGMPdependent protein kinase regulation of glucosemediated Thrombospondin1dependent transforming growth factorβ activation in mesangial Cells[J]. Biol chem, 2002,277:98809888.
[28] Wang S, Shiva S, Poczatek MH, et al . Nitric oxide and cGMPdependent protein kinase regulation of glucosemediated thrombospondin 1dependent transforming growth factorbeta activation in mesangial cells[J]. J Biol Chem, 2002, 277 (12) :98809888.
[29] Yang YL, Chuang L Y, Guh J Y, et al . Thrombospondin1 mediate glycated albumininduced distal tubule hypertrophy [J]. Biochem J, 2004,379 ( 1) :8997.
[30] Poczatek MH, Hugo C, Darley2Usmar V, et al. Glucose stimulation of transforming growth factor2beta bioactivity in mesangial cells is mediated by thrombospondin21 [J]. Am J Pathol, 2000, 157 (4) :13531363.
[31] Yung S, Lee CY, Zhang Q, et al. Elevated glucose induction of thrombospondin1 upregulates fibronectin synthesis in proximal renal tubular epithelial cells through TGFbeta1 dependent and TGFbeta1 independent pathways[J]. Nephrol Dial Transplant, 2006,21: 1504 1513.
[32] Abdelouahed M, Ludlow A, Brunner G, et al. Activation of platelet transforming growth factor 1 in the absence of thrombospondin1[J]. J Biol Chem,2000,275(24):17 93317 936.